5 кл технология: Уроки по технологии для мальчиков 5 класс

Содержание

Первый урок по технологии в 5 классе УМК Н. В. Синица, В. Д. Симоненко «Страна технология» Тема: «Страна технология»

Первый урок по технологии в 5 классе 
УМК Н. В. Синица, В. Д. Симоненко
 «Страна технология»

Тема: «Страна технология»

Цель урока: способствовать формированию первоначальных представлений о предмете технология, провести инструктаж

Задачи урока:

Образовательные: познакомить учащихся с предметом «Технология»; с требованиями охраны труда, санитарии и гигиены; ознакомить учащихся с правилами поведения в мастерской, с содержанием инструкций по охране труда; сформировать у учащихся навыки соблюдения правил техники безопасности и санитарно-гигиенических требований, сформировать у учащихся навыки по организации рабочего места

Развивающие: способствовать развитию памяти, внимания, способствовать

развитию памяти, внимания, наблюдательности; помочь учащимся распознавать

и выделять главное в источнике информации; развивать умение анализировать,

сравнивать, делать выводы, умение работать самостоятельно; способствовать

развитию взаимооценки, самопроверки и самооценки результатов своей

деятельности

Воспитательные: содействовать развитию коммуникативных умений в ходе

групповой работы; воспи­тывать у учащихся чувство ответственности, прививать

на­выки по сохранению собственного здоровья и здоровья окружающих, навыки

культуры труда и аккуратности

Оборудование и материалы: карточки — задания, тетради, письменные принадлежности, презентация, образцы работ, учебники, инструктажи по охране труда

Тип урока — урок освоения новых знаний

Формы работы: индивидуальная; фронтальная; групповая

Методы: словесные — беседа, дискуссия; наглядные — демонстрация

Ход урока

    Организационный момент

    Мотивация учащихся

Перед вами коробка с остатками лоскутков.

— Что можно с ними сделать? А девочки нашей школы на уроках технологии смогли сделать из них такие прекрасные изделия! (Презентация изделий выполненных девочками из старших классов)

— Красиво? Можно их назвать мастерами своего дела?

— Думаю, у вас также есть желание стать настоящими мастерами своего дела? Новый предмет «Технология» — это то, что вам нужно!

3. Знакомство с новым материалом

Сегодня нас ждет увлекательное путешествие в «Страну Технологию».

Слово «Технология» происходит от древнегреческого tehne -«искусство», «мастерство», «умение» и logos – «учение», «наука». Технология — это наука об умении, мастерстве, искусстве.

Технология применима повсюду, где имеется достижение, стремление к результату. До появления технологии господствовало искусство — человек делал что-то, но это что-то получалось только у него, это как дар — дано или не дано. С помощью же технологии все то, что доступно только избранным, одаренным (искусство), становится доступно всем. Чтобы стать разносторонне подготовленными людьми, уметь добиться в жизни намеченных целей, нужно многое знать и уметь, в том числе овладеть самыми необходимыми технологическими навыками. На уроках технологии вы научитесь готовить вкусную и полезную пищу, овладеете различными способами обработки материалов, научитесь работать на швейной машине, приобретете навыки ухода за одеждой, предметами быта, освоите различные виды рукоделия: вышивку, вязание, лоскутную пластику.

«Я умею и научу тебя!»- Вы также сможете сказать, изучив основы нового предмета своим младшим сестренкам, подругам! А свои изделия вы сможете продемонстрировать не только дома своим родным и близким, но и на всевозможных школьных, городских и областных выставках.

Я думаю, что вы все меня порадуете хорошей работой. Работать будете по группам. За окном стоит хорошая осенняя погода, и вас всех встречают листочки с вашими именами. И в конце урока вы получите листочек за активную работу на уроке. Я уверена, что вы все хорошо подготовились.

    Мотивация учащихся

Каждой группе раздается несколько изделий выполненных учащимися нашей школы.

1 группа – картина вышитая крестиком, связанная салфетка крючком

2 группа – картина вышитая лентами, связанный шарф спицами

3группа – коврик, выполненный в лоскутной технике, салфетка вышитая гладью

Внимательно рассмотрите эти все изделия, что вы сможете сказать? (обсуждение работ)

— Вот такие прекрасные вещи создают человеческие руки! Когда вы мастерите нечто, получается изделие! И будь то картина, салфетка, кружево или любое иное изделие, плод вашего труда уже начинает самостоятельное движение по жизни. Вы уже не просто труженик, вы — создатель нового, мастер своего дела! И всем нам известно, что работа, выполненная своими руками, ценится намного дороже, вы в неё вложили частицу своего труда ,силы, душу и много времени.

— Красиво? Можно девочек назвать мастерами своего дела?

— Думаю, у вас также есть желание стать настоящими мастерами своего дела? А для этого необходимо изучать новый предмет «Технология» — это то, что вам нужно!

3. Изучение нового материала

Беседа с классом по вопросам:

1Что мы знаем о труде?

2.Какова роль труда в жизни человека и общества?

3.Что вы понимаете под словом «труд» ?

4.Что вы понимаете под словом «работа»

Объяснение нового понятия «ТЕХНОЛОГИЯ»

Технология- учение о мастерстве, умении.

Труд- деятельность человека,(требующая усилий).связанная с созданием чего-либо

Рабочее место- часть пространства, приспособленная для выполнения какой-либо работы

Инструмент- средство воздействия на объект при помощи руки человека

А чему вы должны будете научить на уроках технологии? Для чего это всё нужно?

Значит, что такое технология? Технология – это особая наука об умении, мастерстве, искусстве. Слово «Технология» происходит от древнегреческого tehne -«искусство», «мастерство», «умение» и logos – «учение», «наука». Технология применима повсюду, где имеется достижение, стремление к результату.

На уроках технологии вы научитесь готовить вкусную и полезную пищу, овладеете различными способами обработки материалов, научитесь работать на швейной машине, приобретете, навыки ухода за одеждой, предметами быта, освоите различные виды рукоделия: вышивку, вязание, лоскутную пластику.

— Мастерская – необычный кабинет. Кабинет для настоящих мастериц! В мастерской не просто столы, это специальная мебель для швейной мастерской, много швейных машин, гладильная доска с утюгом, специальные инструменты и приспособления для изготовления различных изделий.

«Разминка»

Задание необходимо восстановить пословицу по ключевым словам.

1. Кататься – возить (любишь кататься люби и саночки возить)

2. Дело – умело (каждое дело делай умело)

3. Нитка – швея (длинная нитка – ленивая швея)

4. Труд – пруд (Без труда не вынешь и рыбки из пруда)

5. Труд – лень (Труд кормит – лень портит)

6. Дело – потеха (Делу время — потехе час)

7. Труд – перетрут (Терпенье и труд всё перетрут)

8. Дело – безделье (Маленькое дело – лучше всякого безделья)

А теперь совершим небольшую экскурсию в мастерской, с указанием опасных факторов.

Работа в данном кабинете требует соблюдения определенных правил — правил внутреннего распорядка в мастерской. Вы должны не только знать эти правила, но неукоснительно их соблюдать! Каждая группа получает карточки – задание, где пропущены слова. Вы должны вставить слова, затем у вас должны, получится, правил внутреннего распорядка в мастерской.

    Дежурные входят в кабинет за 10 минут до звонка и подготавливают кабинет.

    Ученицы должны входить в класс организованно после звонка.

    Надеть специальную одежду и вымой руки (если урок кулинарных работ).

    Сиди на закрепленных местах и не вставай без разрешения учителя.

    Работу начинай только с разрешения учителя. Когда учитель обращается к тебе, приостанови работу. Не отвлекайся во время работы.

    Не пользуйся инструментами, правила обращения, с которыми не изучены.

    Используй инструменты только по назначению

    Не работай неисправными и тупыми инструментами.

    При работе держи инструменты так, как показал учитель.

    Инструменты и оборудование храни в предназначенном для этого месте. Нельзя хранить инструменты и оборудование в беспорядке.

    Содержи в чистоте и порядке рабочее место, бережно относиться к оборудованию.

    Раскладывай инструменты и оборудование в указанном учителем порядке.

    Не разговаривай во время урока.

    Выполняй работу внимательно, не отвлекайся посторонними делами.

    Строго соблюдай правила техники безопасности.

    Обо всех случаях нарушения правил техники безопасности труда и ранениях незамедлительно сообщай учителю.

    Во время перемены выходи из кабинета.

    По окончании работы убери своё рабочее место.

«Отгадай пословицу» необходимо продолжить пословицы и поговорки о труде.

1.Из одних слов шубу……….(не сошьёшь)

2.Кто любит труд, того люди………(чтут)

3.Всякая работа…………… (мастера хвалит )

4.Тому не стыдно, чью работу……..(видно)

5.Без дела жить, только…………….(небо коптить)

6.Землю солнце красит, а человека……..(труд)

7. Тот человек в почёте, чьи руки………..(в работе)

8.Никому не мило, когда……………..(дело хило)

9.Сделал дело………….(гуляй смело)

10. Поспешишь…………(людей насмешишь)

На занятиях вам также будет необходим особый помощник. А кто это? Как вы думаете, для этого нужно будет отгадать загадку.

Учитель – книга у меня.
Как зовут её друзья?
Много знаний ты получишь,
Если ты её изучишь. (учебник)

Это учебник «Технология 5 класс»

Откройте его. Прочитайте, кто является автором. Авторы: В. Н. Синица, В.Д. Симоненко. Видите, сколько людей трудились над созданием данного учебника, чтобы вам интересно было учиться. Внизу, под обращением стоят какие-то знаки. Это не простые знаки – это специальные обозначения. Эти обозначения находятся в каждом параграфе в конце или в середине, они помогают проверить свои знания и лучше подготовиться к уроку. Полистайте учебник и найдите эти обозначения. Молодцы! Посмотрите, чем мы будем заниматься в 5 классе, Видите, сколько нового вам предстоит узнать. В 5 классе вы будете учиться вышивать, шить, готовить пищу и многое другое. из вас

У вас на столах лежат инструменты и приспособления, а на специальных столах стоит швейное оборудование. Они также будут вашими помощниками при изготовлении различных изделий. Постарайтесь определить, самостоятельно для чего они предназначены. Многие вам незнакомы?

— Давайте знакомиться с ними! Найдите их в книге и сравните с теми, что в мастерской.

Вам придется иметь дело с оборудованием и инструментами, неправильное обращение с которыми сопряжено с опасными факторами.

Опасные факторы: травмирование рук; ожоги; поражение электрическим током; пожар. На занятиях вы научитесь, как правильно работать с данным инструментом и оборудованием, чтобы исключить опасные факторы.

— Как вы думаете, для чего разработаны такие правила? Очень важно, чтобы во время работы человек не потерял свое здоровье и не нанес вред здоровью окружающим.

— Когда долго сидишь, быстро устаешь? Чтобы нашему организму немного расслабиться, что нужно делать?

— Правильно, двигаться! На наших занятиях мы будем обязательно делать специальную гимнастику для работников. Прошу вас встать и вместе со мной заняться своим здоровьем!

Физкультминутка.

Ах, как долго мы писали.

Ах, как долго мы писали,

Глазки у ребят устали. (Поморгать глазами)

Посмотрите все в окно, (Посмотреть влево – вправо)

Ах, как солнце высоко! (Посмотреть вверх).

Мы глаза сейчас закроем, (Глаза закрыть ладошками)

В классе радугу построим!

Вверх по радуге пойдем, (Посмотреть по дуге вверх-вправо, вверх-влево)

Вправо, влево повернем.

А потом скатимся вниз, (Посмотреть вниз)

Жмурься сильно, не держись! (Зажмуриться, открыть глаза и поморгать ими).

Наше здоровье позволяют сохранять также и соблюдение правил безопасного труда, техника безопасности. Техника безопасности (ТБ) — это комплекс средств и мероприятий, внедряемых в производство с целью создания здоровых и безопасных условий труда.

Сегодня вы пройдете инструктаж по охране труда при работе с тканью, электрическим утюгом и пожарной безопасности. Будьте внимательны при проведении инструктажа! Знание и соблюдение правил техники безопасности служит надежной гарантией предупреждения несчастных случаев!

А что такое инструктаж?

Инструктаж, как свод закона

Руководствуйтесь и знайте,

И в работе неуклонно

Пункт, за пунктом выполняйте!

Инструктаж по пожарной безопасности.

Проверим ваши знания инструкции по пожарной безопасности.

Будьте внимательны, старайтесь запоминать более точно правила безопасности. Эти правила пригодятся вам в жизни, помогут спасти свою жизнь и жизнь окружающих людей. А если случится пожар, не нужно паниковать! Каждая группа получает карточки – задание, где нужно будет продолжить предложения. Затем зачитывают, что получилось.

Инструктаж по охране труда при работе с иголками, булавками.

Проверим знания инструкции по охране труда при работе с иголками и булавками. Вам они немного знакомы, кое — что проходили в начальных классах. Каждая группа получает конверты со слова, вам нужно будет составить предложения.

Инструктаж по охране труда при работе с ножницами.

Проверим знания по охране труда при работе с ножницами. Каждая команда получает задание, где описана ситуация. В медпункт школы обратилась ученица 7 класса. На уроке технологии получила глубокую рану руки, что она нарушила. Обсуждение ситуации.

Закрепим свои знания

А теперь повторяем технику безопасности!

Что бы друга не поранить

И себе не навредить

Все иголки и булавки

Надо правильно хранить! (ответ учащихся)

Если вдруг игла сломалась

На столе не оставляй

Ты скорей поломку эту

В мусор тут же отправляй ( ответ)

Зубы нам даны, чтоб кушать

Это надо понимать

Ну , а нитку, если нужно

Не кусать, а отрезать! (ответ)

Если ножницы вдруг надо

Вам кому-то передать

Как при этой передаче

Вы их будете держать? ( ответ)

Учитель: Молодцы! Не подвели!

— Выучив правила по охране труда, вы теперь сможете правильно организовать рабочее место?

4.Каждая девочка мечтает быть золушкой ,а потом и принцессой. Верь в себя, старайся ,трудись и твоя мечта сбудется….

Давайте отдохнем и поиграем ,проверим как мы усвоили тему нашего урока. Для этого разгадаем кроссворд.

А теперь проверим себя

4.Рефлексия

я научилась…

было интересно…

теперь я могу…

было трудно…

меня удивило…

мне захотелось…

в дальнейшем мне…..

5. Итог урока

Дорогие девочки, я хочу, что бы все умения и навыки, которые вы приобрели, на уроках доставляли вам радость и обеспечивали успешность вашей работы сейчас и в будущем. Желаю, что бы вас всегда благодарили ваши близкие и родные, за домашние дела, сделанные с любовью и прилежно.

Взаимооценивание, отправляю осенний лист с оценкой, и называется имя

Поблагодарит детей за продуктивную работу.

6. Домашнее задание

Повторить правила. Выполнить творческое задание нарисовать интерьер мастерской по теме «Какой бы я хотела видеть школьную мастерскую»

Источники

    Н. В. Синица, В. Д. Симоненко. Технология ведения дома 5 класс. М. Издательский центр «Вентана – Граф» 2013.

Техника и техническое устройство. Машины (технология, 5 класс)

1. Техника и техническое устройство.

2. Цели урока:

познакомить учащихся с основными понятиями:
техника, техническое устройство, сформировать
понятие о машине;
привить навыки четкого и правильного выражения
своих мыслей, уметь анализировать, выделять
главное, сравнивать; способствовать запоминанию
основной терминологии;
способствовать воспитанию бережного отношения к
оборудованию, эстетических качеств личности.

3. Что такое машина?

Техника – это:
1. станки, приборы, инструменты,
приспособления, бытовые
устройства, транспортные
средства и другие объекты.
2. совокупность приёмов,
применяемых в каком-нибудь
деле, мастерстве
Техника облегчает условия жизни
человека.
Объекты
Естественные
Горы, реки,
моря и др.
природные
объекты
Искусственные
Объекты,
созданные
человеком:
нож, повозка,
книга и др.
Искусственный
объект
Технический
объект
Техническое
устройство
Основная функция технического
устройства — это действие, для
осуществления которого оно создано
Техническое
устройство
Простое
(орудие труда)
Инструмент
Приспособле
ние
Сложное
(техническая система)
Аппарат
Прибор
Машина
Агрегат
Главное отличие машины от других
технических устройств заключается в
том, что без приложения человеком силы
совершает основные рабочие операции.
Машина состоит из элементов.
Приспособление для сверления
(лучковый привод)
Механизм (в пер. с греч. – орудие,
сооружение) – ТУ для передачи и
преобразования движения
Части машины
(сверлильный станок):
1-двигатель;
2-трансмиссия;
3- рабочий орган;
4-органы управления
Основные части машины:
1. Двигатель — источник энергии;
2. Трансмиссия — передает
движение от двигателя на
рабочий орган;
3. Рабочий орган — это орудие,
которое выполняет работу;
4. Органы управления.
Орудие — технический объект,
при помощи которого
осуществляется какое-либо
действие и производится работа.
К ним обычно относятся ручные
инструменты и несложные
приспособления.
Техническая система (ТС)
— составной объект,
состоящий из группы
связанных между собой
частей.
Инструмент – техническое устройство
(ТУ), при помощи которого выполняется
работа.
Приспособление – ТУ, которое облегчает
выполнение работы.
Аппарат – ТУ, в относительно подвижных
частях которого, происходят физические
или химические процессы.
Утюг
Дирижабль
Прибор – ТУ, предназначенное для
восполнения несовершенства, отсутствия
или замены органов чувств человека.
термометр
хронометр
компас
Машина – сооружение (перевод с
латинского).
Паровая машина
Архимедов винт
Агрегат – несколько собранных
разнотипных машин, соединенных в целое
для совместной работы, а также часть
сложной машины, представляющая
законченное целое.
Агрегат
почвообрабатывающий
Паровая машина
паровоза

20. Ссылки на источники

Технология. Технический труд: 5 кл.: Учебник для
общеобразовательных учреждений./ под ред.
В.М,Казакевича, Г.А.Молевой. –М.: Дрофа, 2012.
Технология. Технический труд: 5 кл.: Методическое
пособие к учебнику «Технология. Технический труд. 5
класс» под ред. В.М,Казакевича, Г.А.Молевой / под ред.
В.М,Казакевича, Г.А.Молевой.– М.: Дрофа, 2013.
Изображение «Инструменты» http://all-aboutgermany.info/wp-content/uploads/2015/07/devices2.jpg
Изображение «Тиски»
http://www.snabinstrument.ru/images/t_sl01.jpg
Изображение «Утюг»
http://24.at.ua/2012/kak_vibrat_utug.jpg
Изображение «Дирижабль»
http://minkurort.ru/images/aero/balloon11.jpg
Изображение «Термометр» http://www.tfadostmann.com.ua/tl_files/images/121005.jpg
Изображение «Хронометр»
http://german242.com/w/Wittnauer/wit1s.jpg
Изображение «Паровая машины паровоза» http://imgfotki.yandex.ru/get/6410/109183592.d/0_89c0a_8c2428
4c_XL.jpg
Изображение «Паровая машина»
https://upload.wikimedia.org/wikipedia/commons/thumb/f
/f0/Steam_engine_in_action.gif/300pxSteam_engine_in_action.gif

Конспект урока «Технология изготовления ткани». 5 класс

МОУ СОШ с. Перевесино-Михайловка учитель технологии   Морева Г.В.

Предмет, класс: Технология- 5 класс             

Раздел– Создание изделий из текстильных материалов.

№ ,Тема урока— №1 «Технология изготовления ткани»

Цели: организовать деятельность обучающихся по определению направление нитей основы и утка, научить различать лицевую и изнаночную стороны тканей.

Задачи:— Познакомить с сырьем хлопчатобумажных и льняных тканей, процессом изготовления тканей: прядением, ткачеством, отделкой.               —

              -проинформировать о профессиях прядильщик и ткач;

              — научить определять в ткани направление долевой нити;

              — научить определять лицевую сторону ткани;

              — воспитывать аккуратность и точность в работе.

Тип урока: комбинированный («открытие нового знания», практическое закрепление знаний)

Форма обучения: фронтальные, индивидуальные, парные

Методы обучения :проблемное изложение, объяснительно – иллюстративный: рассказ, беседа; лабораторно – практическая работа.

Наглядные пособия:компьютер, презентация, учебник Н.В. Синица, П.С. Самородский – Технология 5 кл, универсальная линия, раздаточный материал (образцы тканей), отчёт в форме таблицы.

Место проведения: класс

                             Ход урока:

1.     Организационная часть.

2.     Актуализация прежних знаний

3.     Изучение новых понятий и способов деятельности

4.     Учебно – тренировочная часть

5.     Заключительная часть.

 

                        

  Технологическая карта урока.

Ф.И.О. – Морева Галина Владимировна

Тема:  «Технология изготовления ткани»

 

 

 

№ п/п

 

 

 

Этап урока

 

 

 

Частная задача этапа

Планируемые результаты

Средства, методы обучения и воспита-

ния, формы органи-

зации учебной дея-

тельност, методы и формы организации контроля, способы оценивания

 

 

 

Деятельность учителя

 

 

 

Деятельность учащихся

 

 

  предметные

 

 

УУД

1

2

3

4

5

6

7

8

1.

Организации-

оная часть.

 

Создать условия для мотивации у ученика внутренней потребности включения в учебный процесс

Понимание и определение цели урока

Личностные (эмоциональный настрой на урок)

Познавательные (активное слушание, выдвижение предположений о теме урока)

коммуникатив-

ные (слушание собеседника, построение понятных для собеседника высказываний)

Беседа, проблемное изложение – рассказывает проблему в новой ситуации, м-д воспитания: словом, фронтальная, м-д контроля – устный опрос по вопросам

— приветствие

— проверка явки учащихся

— проверка готов-ности уч-ся к уроку

— настрой на работу

— дает определения понятий, задает наводящие вопросы,

 

— слушают учителя,

— фиксируют проблему,

-принимают и сохраняют учебную цель и задачу

— отвечают на вопросы

2.

Актуализация прежних знаний

 

Закрепить полученные знания.

Подготовить уч-ся к изучению новой темы

Понимают, что такое  волокно, ткань

Личностные (активизация имевших ранее знаний)

Коммуникативные (сотрудничество с учителем, уч-ся)

Познавательные (формировать умение извлекать информацию из тестов, иллюстраций)

Беседа, м-д воспитания: словом, фронтальная, м-д контроля – устный опрос по вопросам

Задает вопросы для повторения, контролирует правильность ответов: правильный ответ – 1 балл

-ставит проблемный вопрос: Как же из отдельных волокон сделать ткань?

Отвечают на вопросы, формулируют собственное мнение; самооценка

3

Изучение новых понятий и способов деятельности

 

Формирование знаний о прядильном и ткацком производстве, ткацких переплетениях

Знают схемы видов ткацких переплетений, знают информацию о профессиях прядильщик и ткач

Коммуникативные (сотрудничество в поиске и сборе информации),

Познавательные (поиск и усвоение информации),

Метапредметные умение пользоваться литературой)

бесседа, м-ды контроля (тестирование),

Средства – презентация, виды ткацких переплетений.

Рассказ, беседа о этапах получение ткани, отделки ткани. Показывает презентацию, проводит опрос.

Запоминают, отвечают на вопросы, запись понятий.

4

Физкульт-минутка

 

 

 

 

 

 

5

Учебно – тренировочная часть

 

Научить

Понимать ход выполнения лабораторной работы

Регулятивный (самоконтроль выполнения задания),

Личностная (чувство ответственности, аккуратности)

Метапредметные (развитие навыков самоконтроля)

Средства – образцы ткани, м-ды –упражнения,

М-д контроля – практическая работа, форма обучения – индивидуальная, м-ды воспитания – чувства ответственности, м-ды контроля – педагогическое наблюдение

Знакомит с критериями

Показывает приемы  работы, знакомит с последовательностью технологии выполнения работы, организовывает самоконтроль и осуществляет его только в соответствии с критериями,

Осуществляет самоконтроль, работают индивидуально, осознают последователь-ность приемов, выполнения требований к ним. Выполняют лабораторную работу, делают выводы. Самоконтроль по критериям.

6

Заключительная часть:

— уборка рабочего места,

— рефлексия,

— домашнее задание.

Фиксация нового содержания, изученного на уроке

Анализ работы на уроке

Коммуникативные (умение полно и точно выражать свои мысли),

Познавательные (рефлексия)

Форма обучения – индивидуальное, м-ды контроля — тестирование

М-ды воспитания общением.

Организует рефлексию.

Предлагает закончить предложения…

обобщение и систематизация знаний, выражают свои эмоции по поводу урока

 

                                                                            

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Ход  урока по технологии в 5 классе на тему: «Технология изготовления ткани»:

1.     Организационная часть.

 

1.Учитель проверяет готовность учащихся к уроку, отмечает отсутствующих.

2.     Актуализация прежних знаний.

В начальной школе вы знакомились с производством ткани. Рассмотрим коллекции тканей и волокон на столах и попробуем  определить из чего они состоят. Вопросы:

1. Из чего состоит ткань? – из нитей.

2. Из чего состоят нити? – из тонких волокон

3. А как получить волокна? – дети вспоминают, что в деревне бабушки получают волокно? – с овец и вяжут носки, свитера и т.д.

Учитель ставит проблемный вопрос: Как же из отдельных волокон сделать ткань?

3.     Изучение новых понятий и способов деятельности.

Вы оказались на необитаемом острове, без одежды и запасов пищи? Смогли бы вы себя обслужить? Ну, например, изготовить одежду?

Ответ: Нет!

А знаете почему? Потому что не хватает знаний! Но это можно исправить.

Каждый из вас носит в школе, дома, на улице различную одежду. — Как вы думаете из чего она сшита? Конечно из ткани. — А ткани все одинаковые? Ткани разные: гладкие, ворсистые, плотные и тонкие, цветные и однотонные.
          — Для чего еще человек применяет ткани, кроме пошива одежды? Для пошива белья, обивки мягкой мебели, для изготовления парашютов, палаток, зонтов, игрушек и т. д.
В начальной школе вы уже работали с тканью и некоторые сведения о тканях уже получили. В этом году вам предстоит выполнить пошив швейного изделия – фартук. Но чтобы сшить любое изделие, надо правильно выбрать ткань, узнать ее свойства.

Поэтому чтобы приступить к изготовлению швейного изделия надо познакомиться с технологиями изготовления ткани или основами материаловедения.
           Тема нашего урока: «Технология изготовления ткани»  ( тему записывают в тетради ) На уроке мы познакомимся с сырьем хлопчатобумажных и льняных тканей, процессом изготовления тканей, со строением и свойствами тканей. Научимся определять направление нитей основы и утка, лицевую и изнаночную стороны тканей.
            Как вы думаете — Всегда ли существовала ткань?
Первой одеждой человека были листья, трава, шкуры убитых животных. Такая одежда была неудобна, быстро загрязнялась. Постепенно человек развивался, занимался разными видами деятельности и научился изготавливать ткани.
Работа в тетради: записываем определение волокна. Волокно – это очень прочные, тонкие, гибкие нити, длина которых в несколько раз превышает их поперечные размеры.
А сейчас я на доске, а вы в тетради попробуем составить схему: « Классификация текстильных волокон»
Текстильные волокна
Натуральные Химические
Растительные Животные Минеральные
Хлопок Лен Шелк Шерсть Асбест
В 5 классе мы подробно изучаем о волокнах льна и хлопка. Показ презентации с объяснением.

Скажите, а как вы понимаете словосочетание «волокна растительного происхождения»?

Ответ:Волокна, которые получают из растений.

Правильно! А известны ли вам такие растения?

(если ученики называют растения, то учитель записывает их на доске и дополняет своими)

                                Хлопок

                                Лен

                                Крапива

                                Конопля

                                Джут

                                Кенаф

Из крапивы, конопли, джута и кенафа получают технические ткани, шпагаты.

А вот из хлопка и льна получают прекрасные ткани.

 

     Для хлопчатобумажных тканей сырьем являются волокна хлопчатника (показ волокон и растения). Хлопчатник – это теплолюбивое кустарниковое растение высотой около 1м. Выращивают в Узбекистане, Казахстане. Плоды хлопчатника – коробочки, которые содержат многочисленные семена, покрытые длинными волосками. Эти волоски называются волокнами хлопка. Хлопок называли « белое золото». Волокна хлопка имеют различную длину – от 6 до 50 мм. Волокна хлопка имеют определенные свойства. Природный цвет хлопка – белый, кремовый, но встречаются и другие . Хлопок быстро впитывает влагу и быстро высыхает. Способность волокон поглощать влагу из окружающей среды называется гигроскопичность. У хлопка она высокая. На ощупь волокна мягкие, тепловатые. Хлопок применяется в производстве тканей, трикотажных изделий, ниток. Шьют из него постельное белье, халаты, фартуки. Хлопчатобумажные ткани: ситец, сатин, бязь, фланель, батист, вельвет( показ тканей) прочны, гигиеничны, легки, имеют длительный срок службы. Удобны в носке, легко стираются и утюжатся.

Для льняных тканей сырьем являются волокна льна (показ волокон и растения). Лен – это однолетнее растение до 1м, дающее волокно из стебля. Лен выращивают в Ивановской, Костромская, Вологодская и других областях. Лен называли русским шелком. В каждом стебле 300 – 600 волокон. Длина волокна 35 -90 мм. Использую чаще сорт лен – долгунец. Лен обладает характерным блеском, т.к. его волокна имеют гладкую поверхность. Гигроскопичность льняного волокна больше чем хлопкового. На ощупь волокна льна прохладные, жесткие. Используют для производства летних костюмно – плательных тканей. Шьют постельное белье, полотенца, скатерти, салфетки. Льняные ткани имеют гладкую поверхность, прочные, сильно сминаются, но хорошо утюжатся. Они отличаются высокими гигиеническими свойствами, быстро впитывают и испаряют влагу, легко отстирываются. Лен переносит больший нагрев утюга, чем хлопок.

      А теперь вернемся к вопросу — Как же из отдельных волокон сделать ткань?

Необходимо волокна соединить в пряжу( в нити), а из нитей изготовить ткань. Процесс получения ткани можно представить в виде схемы: волокно – пряжа – ткань.  

           Пряжа — это тонкая длинная нить, выработанная из коротких волокон путем скручивания. Производство пряжи – сложный процесс. Волокна разрыхляют и очищают от примесей, перемешивают, прочесывают и формируют в ленту. Ленту выравнивают и скручивают для того, чтобы нить была прочной. На протяжении тысячелетий единственным орудием прядильщицы веретено и прялка. После изобрели самопрялку.   Позднее изобрели прядильную машину. Сейчас прядение происходит на прядильных фабриках, пряжу наматывают на большие шпули.    На прядильных фабриках работают люди различных профессий – прядильщицы, ровничницы, чесальщицы и т. д.

Прядение — это процесс, в результате которого из волокна получают пряжу. Ткачество – это процесс получения ткани из пряжи.( записывают в тетради)
Изготавливают ткань на ткацких станках, на которых работают ткачи. Ручной ткацкий станок был изобретен очень давно и применялся до 17 века. Позднее был изобретен механический ткацкий станок.     Ткань снятую с ткацкого станка ( суровая) подвергают отделке: удаляют кончики волокон, отбеливают, красят( опускают в краситель) или печатают( наносят рисунок). ( показ иллюстраций ). Ткань прошедшую отделку называют готовой.
Ткацкое переплетение — это переплетение нитей основы и утка. Основой — называют нити, идущие вдоль ткани. Уток— это поперечные нити в ткани. ( записывают в тетради)
Нити основы длинные, тонкие, менее растяжимые и более прочные. Нити утка менее прочные , более толстые, короткие. Нити утка, пройдя между нитями основы на всю ширину ткани, поворачиваются обратно, не обрываясь. Поэтому вдоль ткани получаются неосыпающиеся края – кромки. Расстояние от кромки до кромки называется шириной ткани. Существуют разные переплетения нитей в тканях. Самый распространенный вид переплетения – полотняное. В нем уточные и основные нити чередуются через одну. (показ иллюстраций и ткани).

 

.Лабораторно-практическая работа «Определение направления долевой нити в ткани» ( стр. 103 учебника)

Критерии оценки работы:

За правильный определение долевой нити на лоскутке без кромки – 1 балл, за неправильное – 0 баллов.

Порядок выполнения работы:

Выньте из ткани по две нити разного направления вдоль – основа, поперек – уток (учитель помогает заполнить первую колонку).

Возьмите лупу и сравните, какая из ниток толстая, а какая тонкая? Запишите в тетрадь.

Рассмотрите, какая нитка гладкая, а какая пушистая?

Теперь ответьте на вопрос: Какая нить ровная, а какая извитая?

Какая нить тянется больше, а какая меньше?

Все ответы запишите в таблицу.

Нить

 

 

Вдоль или

Поперек ткани

Толстая или

Тонкая

Гладкая или

пушистая

Ровная или

извитая

Тянется больше или меньше

 

Основа

 

 

 

 

 

 

Уток

 

 

 

 

 

 

(под таблицей приклеивают образцы)

Проверяют здесь же и оценивают по критерию.

Очень часто, работая с тканью, необходимо знать, как направлена нить основы. На образцах, которые вы получили, я обозначила направление основы. Но вы должны уметь это делать самостоятельно.

Есть три способа определения нити основы:

                      А) по кромке

                      Б) по растяжению

                      В) по звуку

(учитель показывает на образцах, записывают в тетрадь)

А сейчас попробуйте определить направление нити основы сами.

(образцы ткани размером 20*20 без кромки)

                       И еще один маленький вопрос мы должны решить.

(Учитель показывает подготовленную заранее коллекцию образцов, прикрепленных разными сторонами наружу)

Посмотрите и скажите, чем отличаются эти лоскутки?

(Учащиеся должны ответить, что часть лоскутов прикреплена лицевой стороной, а часть изнаночной)

Как определить лицевую сторону?      (учащиеся сами пробуют ответить. Учитель только направляет их ответы)

 

Лабораторно-практическая работа «Определение лицевой и изнаночной сторон ткани» ( стр. 104 учебника)

Критерии оценки работы:

·        Лицевая и изнаночная стороны набивной ткани определены и приклеены верно – 1 балл;

·        Лицевая и изнаночная стороны гладкокрашенной ткани определены и приклеены верно – 1 балл;

·        Образцы ткани в коллекции одинакового размера, вырезаны ровно – 1 балл;

·        Образцы ткани в коллекции приклеены аккуратно – 1 балл

                     Вывод: запись в тетради:

Лицевую сторону определяют по яркости, по гладкости, по блеску, по чистоте отделки.

Учащиеся проводят cамоконтроль по критериям.

Ну, вот и все. Мы справились с целью сегодняшнего урока. Вы пополнили запас знаний. Теперь вы хорошо знаете растения, из которых получают ткань. Для вас теперь не будут незнакомыми слова «основа», «уток», «кромка». На следующем занятии мы продолжим знакомство с тканями.

(Учитель  и учащиеся оценивают работу учеников).

         Уборка рабочего места.

       Рефлексия учебной деятельности.

 Учитель просит детей оценить деятельность на уроке  Слайд.

На экране – рефлексия учебной деятельности, дополните предложения:

1.     Сегодня я узнала …    Было интересно …     Теперь я могу…

2.     Я научилась…     Урок дал мне для жизни

 

Постановка домашнего задания: Во время просмотра презентации, я обращала ваше внимание на то, что ткань получают путем переплетения ниток. Наиболее простой способ переплетении – полотняное. Дома вы сделаете образец такого переплетения. Это не сложно сделать из бумаги.

(учитель показывает этапы выполнения). Ваша задача сделать переплетение более разноцветным с использованием полосок бумаги более тонких. 

Это будет ваше творческое задание.   Задание по выбору: Подготовить  сообщение о волокнах растительного происхождения: кенаф, джут, бамбук, сизаль

Всероссийская олимпиада в Москве | Предметы

Итоги

Школьный этап
Муниципальный этап
Региональный этап

Задания

Пригласительный школьный этап
Культура дома, дизайн и технологии
задания: 4 кл. | 5 кл. | 6 кл. | 7-8 кл. | 9-10 кл.
решения: 4 кл. | 5 кл. | 6 кл. | 7-8 кл. | 9-10 кл.
Робототехника
задания: 4-5 кл. | 6-7 кл. | 8-10 кл.
решения: 4-5 кл. | 6-7 кл. | 8-10 кл.
видеоразборы: 4-5 кл. | 6-7 кл. | 8-10 кл.
Техника, технологии и техническое творчество
задания: 4 кл. | 5 кл. | 6 кл. | 7-8 кл. | 9-10 кл.
решения: 4 кл. | 5 кл. | 6 кл. | 7-8 кл. | 9-10 кл.
видеоразборы: 4 кл. | 5 кл. | 6 кл. | 7-8 кл. | 9-10 кл.

Школьный этап
Культура дома, дизайн и технологии
задания: 5 кл. теор. | 6 кл. теор. | 7 кл. теор. | 8-9 кл. теор. | 10-11 кл. теор. 
решения: 5 кл. теор. | 6 кл. теор. | 7 кл. теор. | 8-9 кл. теор. | 10-11 кл. теор.
Техника, технологии и техническое творчество
задания: 5 кл. теор. | 6 кл. теор. | 7-8 кл. теор. | 9 кл. теор. | 10-11 кл. теор.
решения: 5 кл. теор. | 6 кл. теор. | 7-8 кл. теор. | 9 кл. теор. | 10-11 кл. теор.
Робототехника
задания: 5-6 кл. теор. | 7-8 кл. теор. | 9-11 кл. теор.
решения: 5-6 кл. теор. | 7-8 кл. теор. | 9-11 кл. теор.
видеоразборы: 5-6 кл. | 7-8 кл. | 9-11 кл.

Муниципальный этап
Культура дома, дизайн и технологии
задания: 7-8 кл. теор. | 9 кл. теор. + прак. | 10-11 кл. теор. + прак.
ответы: 7-8 кл. теор. | 9 кл. теор. | 10-11 кл. теор.
критерии: 7-8 кл. теор. | 9 кл. теор. + прак. | 10-11 кл. теор. + прак.
видеоразборы: 7-8 кл. теор. | 9 кл. теор. | 10-11 кл. теор.
Техника, технологии и техническое творчество
задания: 7-8 кл. теор. | 9 кл. теор. + прак. | 10-11 кл. теор. + прак.
ответы: 7-8 кл. теор. | 9 кл. теор. | 10-11 кл. теор.
критерии: 7-8 кл. теор. | 9 кл. теор. + прак. | 10-11 кл. теор. + прак.
Робототехника
задания: 7-8 кл. теор. | 9-11 кл. теор. + прак.
ответы: 7-8 кл. теор. | 9-11 кл. теор.
решения и критерии: 7-8 кл. теор. | 9-11 кл. теор. + прак.
видеоразборы: 7-8 кл. теор. | 9-11 кл. теор.

Региональный этап
Культура дома, дизайн и технологии
задания: 9 кл. теор. + прак. | 10 кл. теор. + прак. | 11 кл. теор. + прак.
ответы: 9 кл. теор. + прак. | 10 кл. теор. | 11 кл. теор. | 10-11 кл. прак.
Техника, технологии и техническое творчество
задания: 9 кл. теор. + прак. | 10 кл. теор. + прак. | 11 кл. теор. + прак.
ответы: 9 кл. теор. + прак. | 10 кл. теор. | 11 кл. теор. | 10-11 кл. прак.

Конспект урока по технологии 5 класс «Производство ткани»

Министерство образования и науки Удмуртской республики

Управление образования Администрации г. Ижевска

Муниципальное бюджетное общеобразовательное учреждение

«Средняя общеобразовательная школа № 77»

Конспект урока по технологии 5 класс

Тема: «Производство ткани»

Подготовила

учитель технологии

Кононова

Елена Владимировна

г. Ижевск

2013г.

Раздел: Материаловедение.

Тема урока: Производство ткани.

Цели урока:

Ознакомить учащихся с производством ткани и их структурой. Профессиями прядильщика и ткача.

Научить определять направление долевой нити и лицевую сторону ткани.

Развитие внимания ,наблюдательности.

Ход урока

  1. Организационный момент.

  2. Изучение нового материала:

  • Основные сведения о тканях и волокнах.

  • Профессии прядильщика и ткача.

  • Производство пряжи и её использование.

  • Производство ткани.

  • Нити основы и утка. Признаки определения нитей.

  • Признаки определения лицевой и изнаночной сторон ткани.

  • Полотняное переплетение.

  1. Лабораторная работа: « Определение в ткани направления нитей основы и утка».

  2. Подведение итогов занятия.

  3. Д/з.

Учитель. Текстильная промышленность нашей страны выпускает много разнообразных тканей, различных по составу, строению и отделке. Ткани отличаются по внешнему виду, свойствам и требуют разных приемов обработки, как в процессе шитья, так и при стирке и глаженье. По волокнистому составу ткани делятся на 4 группы: хлопчатобумажные, льняные, шерстяные и шелковые.

Далее учащиеся отвечают на вопросы, учитель, обобщая ответы учащихся, расширяет и углубляет полученные от них сведения.

  • Как используют ткани в быту и на производстве? Что, кроме одежды, делают из ткани? (изготовление одежды, обуви, обивка мебели, игрушки, зонты, палатки, паруса, рюкзаки и т.д.)

  • Из чего состоит ткань? (из тонких между собой нитей)

Итак, ткань состоит из нитей. Учащимся раздаются образцы тканей. Вынимая толстой иглой нити, дети могут рассмотреть, как они переплетаются между собой.

Учащиеся, распушив концы нитей, убеждаются, что каждая нить состоит из отдельных тонких волокон, перекрученных между собой.

Далее учитель знакомит учащихся с классификацией волокон. По своему происхождению все волокна делятся на натуральные и химические. К натуральным волокнам относят волокна растительного, животного и минерального происхождения. Волокна растительного происхождения – хлопок, лён, джут, конопля, кенаф.

Волокна животного происхождения – коконы тутового шелкопряда, шерсть животных.

К волокнам минерального происхождения относят асбест. Асбестовые нити и ткани используют как изолирующий материал.

Химические волокна – это волокна, созданные искусственным путем из древесины, нефти, природного газа и каменного угля.

Производство ткани.

Еще в глубокой древности человек научился соединять отдельные короткие и тонкие волокна в длинные нити – пряжу и делать из неё ткани. Чтобы изготовить пряжу, люди использовали волокна, которые могли получить в тех природных условиях, которые их окружали. Сначала это были волокна дикорастущих растений, потом шерсть животных, а затем волокна культурных растений – льна и конопли. С развитием земледелия начали возделывать хлопчатник, дающий очень хорошее и прочное волокно. В дальнейшем ткани стали изготавливать из самых разнообразных волокон.

Производство ткани состоит из следующих операций: прядение, ткачество, отделка. Первым этапом в производстве ткани является получение пряжи из волокон.

Пряжа – это тонкая длинная нить, выработанная из коротких волокон путем их скручивания и предназначенная для производства тканей, швейных ниток, трикотажа и других текстильных изделий.

Волокна, поступающие на прядильную фабрику – разрыхляют, очищают от сора, расчесывают, а затем вытягивают в тонкую ровную непрерывную ленту. Эту ленту выравнивают и слегка перекручивают – получается ровница. На прядильных машинах с помощью веретен из ровницы вырабатывают пряжу. Совокупность операций, в результате которых из волокнистой массы получается пряжа, называется прядением. Цель прядения — получение длинной, равномерной по толщине пряжи. Готовую пряжу наматывают на шпули. На прядильной фабрике работают люди различных профессий. Основная профессия прядильного производства прядильщик. Прядильщики обслуживают одновременно несколько прядильных машин. Они ликвидируют обрыв ровницы и пряжи, меняют бобины, выполняют работу по уходу за оборудованием.

Пряжа поступает на ткацкую фабрику, где на ткацких станках вырабатывают ткань.

Ткань – это материал, который изготовляют путем переплетения нитей. Процесс получения ткани называется ткачеством. На ткацких станках работают ткачи. Они обслуживают одновременно несколько станков. Нити, идущие вдоль ткани, называют нитями основы. Нити, расположенные поперек называют нитями утка. С двух сторон ткани по долевой нити образуются неосыпающиеся края – кромки.

Кромка – неосыпающийся край ткани.

Определение в ткани направления нитей основы и утка.

Учитель. Умение определять направление нитей основы и утка имеет важное значение при раскрое ткани и шитье.

Нити основы можно определить по следующим признакам:

  • по кромке (нить основы проходит вдоль кромки)

  • по степени растяжения (нить основы растягивается меньше)

  • по виду нитей (нить основы прямая, нить утка – извитая)

  • по звуку (нить основы- звонкий при резком растяжении, нить утка – глухой).

Лабораторно – практическая работа: «Определение в ткани нитей основы».

2 образца ткани: один с кромкой, другой без неё.

Определение лицевой и изнаночной сторон ткани.

Ткань имеет две стороны – лицевую и изнаночную. Учащимся раздаются образцы тканей – гладкокрашеная, пестротканая, напечатанная, с гладкой поверхностью, с ворсовой поверхностью. Далее учитель объясняет: белая или гладкокрашеная ткань – снятая со станка имеет грязновато-серый или желтый цвет и шероховатую поверхность. Её подвергают отделке – опаливают, отбеливают. Пропитывают различными составами, красят. Все операции выполняют с лицевой стороны. Поэтому лицевая сторона ткани всегда более гладкая. На ней меньше узелков и ворсинок.

Таким же образом определяется лицевая сторона пестротканой ткани.

Напечатанная ткань. Рисунок на изнаночной стороне виден не четко. Потому, что рисунок наносят на ткань с лицевой стороны. Чем толще ткань, тем бледнее рисунок.

Показывая ткани с гладкой поверхностью (сатин, атлас) учитель объясняет, что ткани выработанные сатиновым или атласным переплетением с лицевой стороны имеют гладкую, блестящую поверхность. По этому признаку можно и определить лицевую сторону ткани.

Рассматривая образцы вельвета или бархата, объяснить, что у ворсовых тканей ворс длинный ,обычно расположен с лицевой стороны, а изнаночная сторона гладкая или имеет короткий ворс.

Признаки определения лицевой стороны:

Лабораторно – практическая работа: «Определение лицевой стороны ткани».

Учащиеся работают в группах: определяют лицевую сторону в данных им образцов.

Учитель. Ткацкое переплетение – переплетение нитей основы и утка. Нити в ткани переплетаются в определенном порядке. Рассмотрим самый распространённый вид переплетения — полотняное. В полотняном переплетении основные и уточные нити чередуются через одну. Полотняное переплетение имеют хлопчатобумажные ткани – ситец, бязь, батист, а также некоторые льняные и шелковые ткани.

Практическая работа: «Изготовление макета полотняного переплетения».

Подведение итогов занятия.

Вопросы:

  • По каким признакам определяют направление нитей основы7

  • Как чередуются нити в полотняном переплетении?

  • По каким признакам определяют лицевую сторону ткани?

  • Что такое кромка?

Домашнее задание.

Список литературы

  1. А.Я.Лабзина, Е.В.Васильченко «Занятия по трудовому обучению». – М: Просвещение,1990.

  2. Ю.В. Крупская, Н.И. Лебедева. Технология 5 класс. – М: Вентана Граф, 2004.

Симоненко. Технология для мальчиков 5 класс. Индустриальные технологии (Тищенко). Учебник (Вентана-Граф)

Переплет твердый
ISBN 978-5-36-011165-8
Год издания 2021
Соответствие ФГОС ФГОС
Наличие в федеральном перечне ФП
Количество томов 1
Количество страниц 176
Серия Алгоритм успеха. Школа мастерства
Издательство Вентана-Граф
Автор
Возрастная категория 5 кл.
Раздел Технология
Тип издания Учебник
Язык русский

Описание к товару: «Симоненко. Технология для мальчиков. 5 класс. Индустриальные технологии (Тищенко). Учебник»

Учебник подготовлен в соответствии с авторской программой по технологии. Учащиеся изучают технологии издания изделий из древесины и металлов, технологии ведения дома. Закрепления теоретических знаний осуществляется в процессе выполнения учебных творческих проектов.

Раздел: Технология

Издательство: ВЕНТАНА-ГРАФ
Серия: Алгоритм успеха. Школа мастерства

Вы можете получить более полную информацию о товаре «Симоненко. Технология для мальчиков 5 класс. Индустриальные технологии (Тищенко). Учебник (Вентана-Граф)«, относящуюся к серии: Алгоритм успеха. Школа мастерства, издательства Вентана-Граф, ISBN: 978-5-36-011165-8, автора/авторов: Тищенко А.Т., Симоненко В.Д., Синица Н.В., если напишите нам в форме обратной связи.

Знаете ли вы 5 типов стволовых клеток?

* Сообщение также доступно на: Español العربية 简体 中文 हिन्दी Română

По мере того, как вы начинаете узнавать о стволовых клетках, один из наиболее частых вопросов, который вам нужно задать: «Какие типы стволовых клеток существуют?» Не существует согласованного количества типов стволовых клеток, потому что стволовые клетки можно классифицировать либо по потенциалу дифференцировки (во что они могут превратиться), либо по происхождению (откуда они получены). Этот пост посвящен объяснению пяти типов стволовых клеток на основе потенциала дифференцировки.

5 типов стволовых клеток по потенциалу дифференцировки

В этой статье обсуждаются пять различных типов стволовых клеток:

Все существующие стволовые клетки можно разделить на одну из пяти групп в зависимости от их способности к дифференцировке. Каждый из этих типов стволовых клеток более подробно рассматривается ниже.

1. Тотипотентные (или всемогущие) стволовые клетки

Эти стволовые клетки являются самыми мощными из существующих.

Они могут дифференцироваться в эмбриональные и внеэмбриональные ткани, такие как хорион, желточный мешок, амнион и аллантоис.У человека и других плацентарных животных эти ткани образуют плаценту.

Наиболее важной характеристикой тотипотентной клетки является то, что она может генерировать полностью функциональный живой организм.

Самым известным примером тотипотентной клетки является оплодотворенная яйцеклетка (образованная, когда сперматозоид и яйцеклетка объединяются в зиготу).

Примерно через четыре дня после оплодотворения эти клетки начинают специализироваться на плюрипотентные клетки, которые, как описано ниже, являются гибкими клеточными типами, но не могут производить целый организм.

2. Плюрипотентные стволовые клетки

Следующим наиболее мощным типом стволовых клеток является плюрипотентная стволовая клетка.

Важность этого типа клеток заключается в том, что они могут самообновляться и дифференцироваться в любой из трех зародышевых листков: эктодерму, энтодерму и мезодерму. Эти три зародышевых листка далее дифференцируются, образуя все ткани и органы человека.

Существует несколько известных типов плюрипотентных стволовых клеток. Среди естественных плюрипотентных стволовых клеток эмбриональных стволовых клеток являются лучшим примером.Эмбриональные стволовые клетки — это уникальные клетки, которые существуют в зародыше на ранней стадии.

Также существует другой тип плюрипотентных стволовых клеток, «созданный человеком», которым является индуцированная плюрипотентная стволовая клетка (iPS-клетка). iPS-клеток были впервые получены из клеток мыши в 2006 г. и клеток человека в 2007 г. и представляют собой тканеспецифические клетки, которые можно перепрограммировать, чтобы они стали функционально подобными эмбриональным стволовым клеткам.

Благодаря своей мощной способности дифференцироваться в широком разнообразии тканей и своей бесспорной природе индуцированные плюрипотентные стволовые клетки хорошо подходят для использования в клеточной терапии и регенеративной медицине.

3. Мультипотентные стволовые клетки

Мультипотентные стволовые клетки представляют собой средний тип стволовых клеток, поскольку они могут самообновляться и дифференцироваться в определенный диапазон типов клеток.

Прекрасным примером этого типа клеток являются мезенхимальные стволовые клетки (МСК).

Мезенхимальные стволовые клетки могут дифференцироваться в остеобласты (тип костных клеток), миоциты (мышечные клетки), адипоциты (жировые клетки) и хондроциты (хрящевые клетки).

Эти типы клеток довольно разнообразны по своим характеристикам, поэтому мезенхимальные стволовые клетки классифицируются как мультипотентные стволовые клетки.

4. Олигопотентные клетки

Следующий тип стволовых клеток, олигопотентные клетки, похожи на предыдущую категорию (мультипотентные стволовые клетки), но их способность к дифференцировке становится еще более ограниченной.

Хотя эти клетки могут самообновляться и дифференцироваться, они могут делать это только в ограниченной степени. Они могут делать это только в тесно связанных типах клеток.

Прекрасным примером этого типа клеток являются гемопоэтические стволовые клетки (HSC).

HSC — это клетки, происходящие из мезодермы, которые могут дифференцироваться в другие клетки крови.В частности, HSC представляют собой олигопотентные стволовые клетки, которые могут дифференцироваться как в миелоидные, так и в лимфоидные клетки.

Миелоидные клетки включают базофилы, дендритные клетки, эозинофилы, эритроциты, макрофаги, мегакариоциты, моноциты, нейтрофилы и тромбоциты, в то время как лимфоидные клетки включают В-клетки, Т-клетки и естественные клетки-киллеры.

5. Унипотентные стволовые клетки

Наконец, у нас есть унипотентные стволовые клетки, которые являются наименее мощным и наиболее ограниченным типом стволовых клеток.

Примером стволовых клеток этого типа являются мышечные стволовые клетки.

Хотя мышечные стволовые клетки могут самообновляться и дифференцироваться, они могут делать это только в один тип клеток. Они однонаправлены в своей способности к дифференциации.

Классификация типов стволовых клеток

Целью этих категорий стволовых клеток является оценка функциональной способности стволовых клеток на основе их способности к дифференцировке.

Важно отметить, что каждая категория имеет разные приложения для исследования стволовых клеток, медицинские приложения и приложения для разработки лекарств.

Если вы нашли этот блог полезным, подпишитесь на новости отрасли стволовых клеток BioInformant.

Ищете лечение стволовыми клетками?

В соответствии с нашим убеждением, цель GIOSTAR — предложить передовые, тщательно изученные варианты терапии стволовыми клетками, предназначенные для омоложения или улучшения качества жизни пациента.

Щелкните здесь, чтобы записаться на консультацию, или задайте в GIOSTAR вопрос о том, как терапия стволовыми клетками может вам помочь.

Технология Т-клеток | Завод по производству клинических клеток и вакцин (CVPF)

  • Узнать больше
  • T-Cell Technology

Т-клеточные технологии

Базовая технология расширения Т-клеток

Основной технологией платформы CVPF является использование искусственных антигенпрезентирующих клеток (aAPC) для размножения Т-клеток. Это включает как запатентованные технологии aAPC на основе CD3 / CD28, так и модифицированные технологии aAPC на основе клеток K562 для стимуляции и увеличения Т-клеток.Обе эти матрицы — твердые шарики и самовоспроизводящиеся клетки — обеспечивают стимулирующий (сигнал 1) и костимулирующий (сигнал 2) сигнал Т-клеткам, заставляя их «просыпаться» и делиться. Матрица для клеточной стимуляции важна, потому что она индуцирует сшивание поверхностных рецепторов, что имеет решающее значение для функциональной активации. Эти технологии могут привести к более чем 100-кратному увеличению количества Т-клеток. Эти два подхода позволяют нам преимущественно расширять различные подмножества Т-клеток.

  • В технологии на основе шариков шарики покрыты антителами, которые связываются с Т-клеткой и активируют ее.В частности, стимулирующий сигнал представляет собой антитело против белка Т-клетки, называемого CD3 (анти-CD3-антитело), ​​а костимулирующий сигнал представляет собой антитело против белка CD28 (анти-CD28-антитело). ААРС на основе гранул добавляют к очищенной культуре Т-клеток при ее инициировании и удаляют с помощью магнитов (гранулы имеют железное ядро) перед окончательной формулировкой клеточной терапии и введением пациенту. Используя этот подход, по состоянию на июнь 2014 г. в Университете Пенсильвании и в сотрудничающих центрах было проведено более 1900 инфузий Т-клеток более чем 650 пациентам.

  • Лаборатория д-ра Карла Джуна трансдуцировала линию эритромиелоидных клеток, K562, библиотекой лентивирусных векторов, которые позволяют настраивать экспрессию стимулирующих и костимулирующих молекул, цитокинов и молекул антигена лимфоцитов человека на их поверхности для облегчения aAPC- Т-клеточные взаимодействия. Одновременно стабильно экспрессировалось до семи представляющих интерес генов, и эта способность манипулировать и экспрессировать различные комбинации генов позволяет размножать различные субпопуляции и фенотипы Т-клеток, включая антигенспецифические Т-клетки и генетически модифицированные Т-клетки.Направления интереса передаются в CVPF для создания основного и рабочего банков клеток, которые используются для создания aAPC в поддержку клинических испытаний. Исследователи, благодаря сотрудничеству с CVPF, могут получить доступ к использованию этих реагентов для разработки адаптивных клеточных методов лечения. CVPF хранит мастер-файлы биологических препаратов (BMF) с описанием этих банков клеток и может при необходимости предоставлять письма с перекрестными ссылками для представления IND.

Обзор адаптивного переноса Т-клеток: как работает Т-клеточная терапия

(Прокрутите, чтобы узнать больше или быстро перейти к пункту маркированного списка)
1.Получите клетки от донора и обогатите или выделите конкретные интересующие клетки
2. Стимулируйте рост клеток
3. Вставьте потенциально терапевтические гены в клетки
4. Крупномасштабное размножение клеток
5. Удалите гранулы и промойте клетки
6. Контроль качества (QC )

1. Получение клеток от донора и обогащение или выделение конкретных представляющих интерес клеток

Субъекты (пациенты и / или доноры), участвующие в клеточных клинических испытаниях, сдают лейкоциты методом афереза.Аферез разделяет цельную кровь на компоненты: эритроциты, лейкоциты, тромбоциты и плазму. Часть циркулирующих лейкоцитов собирается, а все остальные компоненты возвращаются донору. Это обычная и безопасная процедура, выполняемая под медицинским наблюдением в банках крови больницы Пенсильванского университета (HUP) или детской больницы Филадельфии (CHOP). Процедура обычно занимает два-три часа, после чего донор может вернуться к нормальной деятельности.Затем продукт афереза ​​транспортируется в CVPF. Для клинических испытаний, проводимых в сотрудничестве с другими медицинскими центрами, аферез и первичная обработка могут выполняться в центре сбора и лаборатории обработки удаленного медицинского центра. Конкретные клетки могут быть обогащены или изолированы CVPF. В зависимости от относительного процента представляющих интерес клеток, положительный или отрицательный отбор может быть выполнен с использованием моноклональных антител, направленных против определенных маркеров клеточной поверхности, связанных с микроскопическими магнитными шариками.Положительный отбор нацелен и изолирует желаемые клетки, в то время как отрицательный отбор нацелен и изолирует нежелательные клетки посредством магнитной сепарации.

Продукт загружается в одноразовый набор и перекачивается через трубки и промывочный контур Cell Saver® 5, когда замораживающая среда удаляется и заменяется промывочным буфером. Конечный промытый продукт затем концентрируют и повторно суспендируют для дальнейших операций, как показано ниже.

2.Стимулируйте рост клеток

Рост лейкоцитов можно стимулировать в лаборатории различными методами. Клетки культивируются в среде, богатой питательными веществами, но для деления и роста им необходим источник стимуляции. В нашем учреждении это обеспечивается связыванием моноклональных антител, направленных против рецепторов клеточной поверхности, с микроскопическими магнитными шариками в качестве искусственного стимулятора или антигенпрезентирующих клеток. Искусственные антигенпредставляющие клетки второго поколения (aAPC), сконструированные для экспрессии различных комбинаций молекул стимуляторов, в настоящее время находятся в стадии разработки и проверки.Смесь клеток, питательной среды и моноклональных антител, иммобилизованных на шариках, добавляют в газопроницаемые пластиковые пакеты и хранят в увлажненных инкубаторах при 37 ° C. Клетки начинают делиться, и через несколько дней можно увидеть, как в пакетах растут скопления клеток, прикрепленные к шарикам, покрытым антителами.

Гранулы коричневато-красного цвета промывают в питательной среде. Затем прикладывают магнит так, чтобы шарики прилипали к стороне трубки во время удаления промывочного буфера, тем самым сводя к минимуму потерю шариков во время этого процесса.

3. Вставить потенциально терапевтические гены в клетки

Иммунные клетки и стволовые клетки можно перенаправить, придать им противоопухолевые или противовирусные свойства или повысить выживаемость посредством переноса терапевтических генов. Эти гены сначала вставляются в носитель, чтобы служить средством доставки в клетку, называемую «вектором». Вектор, добавленный к активированной клеточной популяции, входит в клетку и высвобождает свою полезную нагрузку — ген. Затем клетка принимает ген и экспрессирует его продукт.

4. Крупномасштабное расширение ячеек

Стандартные колбы для культивирования клеток не подходят для крупномасштабного культивирования человеческих клеток для клинических испытаний. Количество клеток, которые можно выращивать в этих колбах, ограничено, и для достижения терапевтического количества желаемых клеток потребуется пространство и рабочая сила, которые непрактичны. Кроме того, эти колбы необходимо открывать для отбора проб и сохранения клеток во время культивирования, и хотя это делается в шкафу с фильтрованным воздухом, существует возможность заражения бактериями, плесенью или грибком.По этим и другим причинам клетки CVPF культивируют в закрытых газопроницаемых пластиковых пакетах. Трубки на мешках и различные соединительные устройства позволяют выращивать клетки в закрытой системе с минимальным риском заражения. Кроме того, каждый из этих пакетов может содержать по несколько миллиардов клеток, что снижает потребность в пространстве и время, необходимое для поддержания культуры.

Новые среды вводятся, когда клеткам нужен свежий источник питательных веществ и белка. Мешок для клеточных культур соединен с мешком для свежей среды, который расположен над мешком для культивирования, что позволяет среде течь в культуру под действием силы тяжести.Количество носителя отслеживается по шкале; когда добавлено достаточное количество, зажимы закрываются, а пробирки снова герметизируются.

5. Удалить шарики и промыть ячейки

Как упоминалось выше, клетки стимулируются с использованием гранул, покрытых антителами, и для роста терапевтического числа клеток требуются большие объемы культуральной среды. Перед инфузией клеток пациенту необходимо удалить шарики, смыть культуральную среду и сконцентрировать клетки в небольшом объеме.Поддерживая замкнутую систему повсюду, культура клеток проходит через очень мощные магниты, которые удерживают шарики, пока клетки протекают. Затем клеточную культуру без гранул загружают в специализированную центрифугу, которая промывает и отделяет клетки от питательной среды. На этом этапе клетки повторно суспендируют в растворе для заваривания или замораживают для будущего использования. Клетки, которые вводятся свежими или криоконсервированными для более поздней инфузии, должны соответствовать всем критериям контроля качества и высвобождения перед выпуском из CVPF.

6. Контроль качества (КК)

Для инфузии клетки должны быть сертифицированы на отсутствие контаминирующих агентов и соответствие определенным требованиям к чистоте или фенотипу клеток, идентичности и активности. Это ответственность компонента контроля качества CVPF. Тестирование на загрязняющие агенты, такие как бактерии, грибки, микоплазмы, бактериальные эндотоксины и ВИЧ p24 (если применимо), можно проводить в нашей лаборатории или по контракту с клиническими справочными лабораториями.Жизнеспособность клеток и фенотипирование выполняются в нашей лаборатории. Результаты этих анализов записываются в формы сертификатов анализа до высвобождения клеток из CVPF и сопровождают клетки к месту инфузии. Независимый сотрудник по обеспечению качества наблюдает за процессом контроля качества.

См. Текущие заявки на участие >>>

Стволовые клетки: прошлое, настоящее и будущее | Исследование стволовых клеток и терапия

  • 1.

    Сукоян М.А., Ватолин С.Ю., и др. Эмбриональные стволовые клетки, полученные из морул, внутренней клеточной массы и бластоцист норки: сравнение их плюрипотентности. Embryo Dev. 1993; 36 (2): 148–58

  • 2.

    Лариджани Б., Исфахани Э. Н., Амини П., Никбин Б., Алимогаддам К., Амири С., Малекзаде Р., Язди Н. М., Годси М., Довлати Ю., Сахрайан М. А., Гавамзаде. А. Терапия стволовыми клетками в лечении различных заболеваний. Acta Medica Iranica. 2012: 79–96 https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/22359076.

  • 3.

    Салливан С., Стейси Г. Н., Акадзава С. и др. Руководство по качеству индуцированных человеком линий плюрипотентных стволовых клеток клинического уровня. Regenerative Med. 2018; https://doi.org/10.2217/rme-2018-0095.

  • 4.

    А, К, Эндрюс П.В. и др. Скрининг этнически разнообразных эмбриональных стволовых клеток человека позволяет выявить минимальный ампликон 20 хромосомы, обеспечивающий преимущество в росте. Nat. Biotechnol. 2011; 29 (12): 1121–44.

    Google Scholar

  • 5.

    Амит М., Ицковиц-Элдор Дж. Атлас плюрипотентных стволовых клеток человека: получение и культивирование. Нью-Йорк: Humana Press; 2012.

    Google Scholar

  • 6.

    Людвиг Т.Э., Бергендаль В., Левенштейн М.Э., Ю. Дж., Пробаско, доктор медицины, Томсон Дж. Корм-независимая культура эмбриональных стволовых клеток человека. Нат методы. 2006; 3: 637–46.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 7.

    Канг Мичиган.Переходное метилирование CpG между промоторами и ретроэлементами тканеспецифичных генов во время дифференцировки мезенхимальных клеток человека. J. Cell Biochem. 2007. 102: 224–39.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 8.

    Ваес Б., Крейе Д., Пинкстерен Дж. Контроль качества при производстве терапевтического препарата на основе стволовых клеток. BioProcess Int. 2012; 10: 50–5.

  • 9.

    Bloushtain-Qimron N. Эпигенетические паттерны эмбриональных и взрослых стволовых клеток.Клеточный цикл. 2009; 8: 809–17.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 10.

    Бриндли Д.А. Пиковая сыворотка: последствия поставок сыворотки для производства клеточной терапии. Регенеративная медицина. 2012; 7: 809–17.

    Google Scholar

  • 11.

    Солтер Д., Ноулз ББ. Иммунохирургия бластоцисты мыши. Proc Natl Acad Sci U S. A. 1975; 72: 5099–102.

    CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 12.

    Hoepfl G, Gassmann M, Desbaillets I. Дифференциация эмбриональных стволовых клеток в эмбриональные тельца. Методы Mole Biol. 2004; 254: 79–98 https://doi.org/10.1385/1-59259-741-6:079.

    Google Scholar

  • 13.

    Лим В.Ф., Иноуэ-Йоку Т., Тан К.С., Лай М.И., Сугияма Д. Дифференциация гемопоэтических клеток из эмбриональных и индуцированных плюрипотентных стволовых клеток. Stem Cell Res Ther. 2013; 4 (3): 71. https://doi.org/10.1186/scrt222.

    CAS Статья PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 14.

    Mohr JC, de Pablo JJ, Palecek SP. Трехмерная микропланшетная культура эмбриональных стволовых клеток человека. Биоматериалы. 2006. 27 (36): 6032–42. https://doi.org/10.1016/j.biomaterials.2006.07.012.

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 15.

    Doetschman TC, Eistetter H, Katz M, Schmidt W., Kemler R. Развитие in vitro линий эмбриональных стволовых клеток, полученных из бластоцисты: формирование висцерального желточного мешка, островков крови и миокарда.J Embryol Exp Morphol. 1985; 87: 27–45.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 16.

    Куросава HY. Методы индукции образования эмбриоидного тела: система дифференцировки эмбриональных стволовых клеток in vitro. J Biosci Bioeng. 2007; 103: 389–98.

  • 17.

    Heins N, Englund MC, Sjoblom C, Dahl U, Tonning A, Bergh C, Lindahl A, Hanson C, Semb H. Получение, характеристика и дифференциация эмбриональных стволовых клеток человека.Стволовые клетки. 2004. 22: 367–76.

  • 18.

    Rosowski KA, Mertz AF, Norcross S, Dufresne ER, Horsley V. Края колоний человеческих эмбриональных стволовых клеток демонстрируют различные механические свойства и потенциал дифференцировки. Sci Rep.2015; 5: Номер статьи: 14218.

    PubMed Google Scholar

  • 19.

    Чунг Ю., Климанская И., Беккер С., Ли Т., Мазерати М., Лу С.Дж., Здравкович Т., Илич Д., Генбацев О., Фишер С., Кртолица А., Ланза Р.Линии эмбриональных стволовых клеток человека, полученные без разрушения эмбриона. Стволовая клетка. 2008; 2: 113–7.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 20.

    Чжан X, Стойкович П., Пржиборски С., Кук М., Армстронг Л., Лако М., Стойкович М. Получение человеческих эмбриональных стволовых клеток из развивающихся и задержанных эмбрионов. Стволовые клетки. 2006; 24: 2669–76.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 21.

    Бирс Дж., Галбрансон Д.Р., Джордж Н., Синискальчи Л.И., Джонс Дж., Томсон Дж. А., Чен Г. Пассирование и расширение колоний плюрипотентных стволовых клеток человека путем безферментной диссоциации в химически определенных условиях культивирования. Nat Protoc. 2012; 7: 2029–40.

    CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 22.

    Эллерстрём К., Хилльнер Дж., Штрел Р. Ферментативная диссоциация единичных клеток человеческих эмбриональных стволовых клеток: простой, надежный и стандартизованный метод культивирования.В: Турксен К., редактор. Протоколы эмбриональных стволовых клеток человека. Методы молекулярной биологии: Humana Press; 2009. с. 584.

  • 23.

    Heng BC, Liu H, Ge Z, Cao T. Механическая диссоциация колоний человеческих эмбриональных стволовых клеток путем ручного соскоба после обработки коллагеназой гораздо более вредна для жизнеспособности клеток, чем трипсинизация с осторожным пипетированием. Biotechnol Appl Biochem. 2010. 47 (1): 33–7.

    Google Scholar

  • 24.

    Ellerstrom C, Strehl R, Noaksson K, Hyllner J, Semb H. Облегченная экспансия эмбриональных стволовых клеток человека путем ферментативной диссоциации одной клетки. Стволовые клетки. 2007. 25: 1690–6.

    PubMed Google Scholar

  • 25.

    Бримл С.Н., Цзэн Х, Вейлер Д.А., Ло И, Лю И, Лион И.Г., Фрид В.Дж., Робинс А.Дж., Рао М.С., Шульц Т.С. Кариотипическая стабильность, генотипирование, дифференциация, поддержание без кормления и выборка экспрессии генов в трех линиях эмбриональных стволовых клеток человека deri.Stem Cells Dev. 2004. 13: 585–97.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 26.

    Watanabe K, Ueno M, Kamiya D, Nishiyama A, Matsumura M, Wataya T., Takahashi JB, Nishikawa S, Nishikawa S, Muguruma K, Sasai Y. Ингибитор ROCK позволяет выжить диссоциированным эмбриональным стволовым клеткам человека. . Nat Biotechnol. 2007. 25: 681–6.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 27.

    Nie Y, Walsh P, Clarke DL, Rowley JA, Fellner T.Масштабируемое пассирование прикрепленных плюрипотентных стволовых клеток человека. 2014. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0088012.

  • 28.

    Томсон Дж., Ицковиц-Элдор Дж, Шапиро С.С., Вакниц Массачусетс, Свиергель Дж. Дж., Маршалл В.С., Джонс Дж. М.. Линии эмбриональных стволовых клеток, полученные из бластоцист человека. Наука. 1998. 282: 1145–7.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 29.

    Мартин М.Дж., Муотри А., Гейдж Ф., Варки А. Эмбриональные стволовые клетки человека экспрессируют иммуногенную сиаловую кислоту, отличную от человека.Nat. Med. 2005; 11: 228–32.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 30.

    Smith AG, Heath JK, Donaldson DD, Wong GG, Moreau J, Stahl M, Rogers D. Ингибирование плюрипотенциальной дифференцировки эмбриональных стволовых клеток очищенными полипептидами. Природа. 1988. 336 (6200): 688–90. https://doi.org/10.1038/336688a0.

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 31.

    Сюй Ц., Инокума М.С., Денхам Дж., Голдс К., Кунду П., Голд ДжейДи, Карпентер М.К.Рост недифференцированных эмбриональных стволовых клеток человека без кормления. Nature Biotechnol. 2001; 19: 971–4. https://doi.org/10.1038/nbt1001-971.

    CAS Статья Google Scholar

  • 32.

    Weathersbee PS, Pool TB, Ord T. Синтетический заменитель сыворотки (SSS): протеиновая добавка, обогащенная глобулином, для культивирования человеческого эмбриона. J. Assist Reprod Genet. 1995; 12: 354–60.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 33.

    Chen G, Gulbranson DR, Hou Z, Bolin JM, Ruotti V, Probasco MD, Smuga-Otto K, Howden SE, Diol NR, Propson NE, Wagner R, Lee GO, Antosiewicz-Bourget J, Teng JM, Thomson JA. Химически определенные условия для получения и культивирования ИПСК человека. Nat. Методы. 2011; 8: 424–9.

    CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 34.

    Зоммер К.А., Мостославский Г. Экспериментальные подходы к созданию индуцированных плюрипотентных стволовых клеток.Stem Cell Res Ther. 2010; 1:26.

    PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 35.

    Такахаши К., Яманака С. Индуцированные плюрипотентные стволовые клетки в медицине и биологии. Разработка. 2013; 140 (12): 2457–61 https://doi.org/10.1242/dev.092551.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 36.

    Shi D, Lu F, Wei Y, et al. Буйволов ( Bubalus bubalis ) клонировали путем переноса ядра соматических клеток.Биол. Репрод. 2007; 77: 285–91. https://doi.org/10.1095/biolreprod.107.060210.

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 37.

    Gurdon JB. Способность к развитию ядер, взятых из клеток кишечного эпителия кормящихся головастиков. Разработка. 1962; 10: 622–40 http://dev.biologies.org/content/10/4/622.

    CAS Google Scholar

  • 38.

    Каин К.Рождение клонирования: интервью с Джоном Гардоном. Dis Model Mech. 2009; 2 (1–2): 9–10. https://doi.org/10.1242/dmm.002014.

    Артикул PubMed Central Google Scholar

  • 39.

    Дэвис Р.Л., Вайнтрауб Х., Лассар А.Б. Экспрессия одной трансфицированной кДНК превращает фибробласты в миобласты. Клетка. 1987. 24 (51 (6)): 987–1000.

    Google Scholar

  • 40.

    Quinlan AR, Boland MJ, Leibowitz ML, et al.Секвенирование генома индуцированных мышами плюрипотентных стволовых клеток выявляет стабильность ретроэлементов и редкую реаранжировку ДНК во время репрограммирования. Стволовая клетка. 2011; 9 (4): 366–73.

    CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 41.

    Maherali N, Sridharan R, Xie W, Utika LJ, Eminli S, Arnold K, Stadtfeld M, Yachechko R, Tchieu J, Jaenisch R, Plath K, Hochedlinger K. Непосредственно перепрограммированные фибробласты, реконструирующие глобальные эпигенетики, и широко распространенный вклад тканей.Стволовая клетка. 2007; 1: 55–70.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 42.

    Ohi Y, Qin H, Hong C, Blouin L, Polo JM, Guo T, Qi Z, Downey SL, Manos PD, Rossi DJ, Yu J, Hebrok M, Hochedlinger K, Costello JF, Song JS , Ramalho-Santos M. Неполное метилирование ДНК подчеркивает транскрипционную память соматических клеток в IPS-клетках человека. Nat Cell Biol. 2011; 13: 541–9.

    CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 43.

    Чжоу К., Браун Дж., Канарек А., Раджагопал Дж., Мелтон Д.А. Перепрограммирование экзокринных клеток поджелудочной железы в бета-клетки in vivo. Природа. 2008; 455: 627–32 https://doi.org/10.1038/nature07314.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 44.

    Hilfiker A, Kasper C, Hass R, Haverich A. Мезенхимальные стволовые клетки и клетки-предшественники в инженерии соединительной ткани и регенеративной медицине: есть ли будущее у трансплантации? Langenbecks Arch Surg.2011; 396: 489–97.

    PubMed Google Scholar

  • 45.

    Чжан Венди, Ю., де Алмейда Патрисия, Э., и Ву Джозеф, К. Формирование тератомы: инструмент для мониторинга плюрипотентности в исследованиях стволовых клеток. StemBook, изд. Сообщество исследователей стволовых клеток . , 12 июня 2012 г. https://doi.org/10.3824/stembook.1.53.1.

  • 46.

    Narsinh KH, Sun N, Sanchez-Freire V, et al. Профили транскрипции отдельных клеток выявляют гетерогенность индуцированных человеком плюрипотентных стволовых клеток.J Clin Invest. 2011; 121 (3): 1217–21.

    CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 47.

    Гертов К., Пржиборски С., Лоринг Дж. Ф., Ауэрбах Дж. М., Эпифано О., Отонкоски Т., Дамьянов И., Арлунд Рихтер Л. Изоляция тератом, полученных из эмбриональных стволовых клеток человека, для оценки плюрипотентности. Биол стволовых клеток Curr Protoc Stem Cell . 2007, Глава 1, Раздел 1B 4. 3: 1B.4.1-1B.4.29.

  • 48.

    Кук М.Дж., Стойкович М., Пржиборски С.А.На рост тератом, происходящих из плюрипотентных стволовых клеток человека, влияет место трансплантата. Stem Cells Dev. 2006. 15 (2): 254–9.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 49.

    Пржиборски С.А. Дифференциация эмбриональных стволовых клеток человека после трансплантации иммунодефицитным мышам. Стволовые клетки. 2005; 23: 1242–50.

    PubMed Google Scholar

  • 50.

    Tannenbaum SE, Turetsky TT, Singer O, Aizenman E, Kirshberg S, Ilouz N, Gil Y, Berman-Zaken Y, Perlman TS, Geva N, Levy O, Arbell D, Simon A, Ben-Meir А, Шуфаро Ю., Лауфер Н., Рубинов Б.Е.Получение не содержащих ксено и отвечающих требованиям GMP эмбриональных стволовых клеток человека — платформы для будущих клинических применений. PLoS One. 2012; 7: e35325.

    CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 51.

    Коэн Д.Е., Мелтон Д. Превращение соломы в золото: определение судьбы клеток для регенеративной медицины. Nat Rev Genet. 2011; 12: 243–52.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 52.

    Hwang NS, Varghese S, Elisseeff J. Контролируемая дифференцировка стволовых клеток. Adv Drug Deliv Rev.2007; 60 (2): 199–214. https://doi.org/10.1016/j.addr.2007.08.036.

    CAS Статья PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 53.

    Тернер Н., Гроуз Р. Передача сигналов фактора роста фибробластов: от развития до рака. Нат Рев Рак. 2010; 10: 116–29.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 54.

    Рао Т.П., Кул М. Обновленный обзор сигнальных путей Wnt: прелюдия к большему. Circ Res. 2010; 106: 1798–806.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 55.

    Moustakas A, Heldin CH. Регулирование передачи сигнала TGFbeta. Разработка. 2009; 136: 3699–714.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 56.

    Efthymiou AG, Chen G, Rao M, Chen G, Boehm M.Стратегии самообновления и дифференциации клеточных клонов в человеческих эмбриональных стволовых клетках и индуцированных плюрипотентных стволовых клетках. Экспертное мнение Biol Ther. 2014; 14: 1333–44.

    PubMed Google Scholar

  • 57.

    Ян Л., Сунпаа М.Х., Адлер Э.Д., Роепке Т.К., Каттман С.Дж., Кеннеди М., Хенкертс Э., Бонэм К., Эбботт Г.В., Линден Р.М., Филд Л.Дж., Келлер Г.М. Клетки-предшественники сердечно-сосудистой системы человека развиваются из популяции, полученной из KDRþэмбриональных стволовых клеток. Природа.2008; 453: 524–8.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 58.

    Крон Э., Мартинсон Л.А., Кадоя К., Банг А.Г., Келли О.Г., Элиазер С., Янг Х., Ричардсон М., Смарт Н.Г., Каннингем Дж., Агульник А.Д., Д’амур К.А., Карпентер М.К., Баетге Э. Энтодерма поджелудочной железы, полученная из эмбриональных стволовых клеток человека, генерирует инсулин-секретирующие клетки, чувствительные к глюкозе, in vivo. Nat Biotechnol. 2008. 26 (4): 443–52. https://doi.org/10.1038/nbt1393.

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 59.

    Валлиер Л., Рейнольдс Д., Педерсен Р.А. Nodal подавляет дифференцировку эмбриональных стволовых клеток человека по нейроэктодермальному пути по умолчанию. Dev Biol. 2004. 275: 403–21.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 60.

    Burridge PW, Zambidis ET. Высокоэффективная направленная дифференцировка индуцированных человеком плюрипотентных стволовых клеток в кардиомиоциты. Методы Мол биол. 2013; 997: 149–61.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 61.

    Cai J, Zhao Y, Liu Y, Ye F, Song Z, Qin H, Meng S, Chen Y, Zhou R, Song X, Guo Y, Ding M, Deng H. Направленная дифференцировка эмбриональных стволовых клеток человека в функциональные печеночные клетки. клетки. Гепатология. 2007; 45: 1229–39.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 62.

    Такасато М., Эр П.Х., Бекрофт М., Вансламбрук Дж. М., Стэнли Е. Г., Элефанти АГ, Литтл М. Х. Направление дифференцировки человеческих эмбриональных стволовых клеток к почечной линии порождает самоорганизующиеся почки.Nat Cell Biol. 2014; 16: 118–26.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 63.

    Хуанг С.Х., Ислам Миннесота, О’Нил Дж., Ху З., Ян Ю.Г., Чен Ю.В., Мумау М., Грин, доктор медицины, Вунджак Новакович Г., Бхаттачарья Дж., Снок Х.В. Эффективное создание эпителиальных клеток легких и дыхательных путей из плюрипотентных стволовых клеток человека. Nat Biotechnol. 2014; 32: 84–91.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 64.

    Кадзик Р.С., Морриси Э.Е. Направление дифференцировки энтодермы легкого в плюрипотентные стволовые клетки. Стволовая клетка. 2012; 10: 355–61.

    CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 65.

    Wichterle H, Lieberam I, Porter JA, Jessell TM. Направленная дифференцировка эмбриональных стволовых клеток в двигательные нейроны. Клетка. 2002; 110: 385–97.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 66.

    Спенс Дж. Р., Мэйхью С. Н., Рэнкин С. А., Кухар М. Ф., Валланс Дж. Э., Толле К., Хоскинс Е. Е., Калиниченко В. В., Уэллс С. И., Цорн А. М., Шройер Н. Ф., Уэллс Дж. М.. Направленная дифференцировка плюрипотентных стволовых клеток человека в ткань кишечника in vitro. Природа. 2011; 470: 105–9.

    PubMed Google Scholar

  • 67.

    Олдершоу Р.А., Бакстер М.А., Лоу Е.Т., Бейтс Н., Грейди Л.М., Сончин Ф., Брисон Д.Р., Хардингем Т.Э., Кимбер С.Дж. Направленная дифференцировка эмбриональных стволовых клеток человека в направлении хондроцитов.Nat Biotechnol. 2010; 28: 1187–94.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 68.

    Джун Кай, Энн ДеЛаФорест, Джозеф Фишер, Аманда Урик, Томас Вагнер, Кирк Твароски, Макс Кайо, Масато Нагаока, Стивен А. Дункан. Протокол направленной дифференцировки плюрипотентных стволовых клеток человека в зависимости от судьбы гепатоцитов. 2012. DOI: https://doi.org/10.3824/stembook.1.52.1.

  • 69.

    Франк-Каменецкий М., Чжан Х.М., Боттега С., Гишерит О, Вихтерле Х, Дудек Х, Бамкрот Д., Ван Ф.Й., Джонс С., Шулок Дж., Рубин Л.Л., Портер Дж.Модуляторы низкомолекулярных сигналов hedgehog: идентификация и характеристика сглаженных агонистов и антагонистов. J Biol. 2002; 1: 10.

    PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 70.

    Осима К., Шин К., Динстхубер М., Пенг А.В., Риччи А.Дж., Хеллер С. Механочувствительные волосковые клетки из эмбриональных и индуцированных плюрипотентных стволовых клеток. Клетка. 2010; 141: 704–16.

    CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 71.

    Осакада Ф., Джин З. Б., Хирами Ю., Икеда Х., Данджио Т., Ватанабе К., Сасай Ю., Такахаши М. Дифференциация клеток сетчатки in vitro из плюрипотентных стволовых клеток человека с помощью низкомолекулярной индукции. J Cell Sci. 2009. 122: 3169–79.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 72.

    Кшитиз П.Дж., Ким П., Хелен В., Энглер А.Дж., Левченко А., Ким Д.Х. Контроль судьбы и функции стволовых клеток с помощью инженерных физических микросред. Интергр Биол (Камб).2012; 4: 1008–18.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 73.

    Amps K, Andrews PW, Anyfantis G, Armstrong L, Avery S, Baharvand H, Baker J, Baker D, Munoz MB, Beil S, Benvenisty N, Ben-Yosef D, Biancotti JC, Bosman A, Brena RM, Brison D, Caisander G, Camarasa MV, Chen J, ChiaoE CYM, Choo AB, Collins D, et al. Скрининг этнически разнообразных эмбриональных стволовых клеток человека позволяет выявить минимальный ампликон 20 хромосомы, обеспечивающий преимущество в росте.Nat Biotechnol. 2011; 29: 1132–44.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 74.

    Нукая Д., Минами К., Хошикава Р., Йокои Н., Сейно С. Предпочтительная экспрессия генов и эпигенетическая память индуцированных плюрипотентных стволовых клеток, полученных из поджелудочной железы мыши. Гены Клетки. 2015; 20: 367–81.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 75.

    Мердок А., Брауд П., Кортни А., Брисон Д., Хант С., Лоуфорд-Дэвис Дж., Мур Н., Стейси Г., Сет С., Рабочая группа по закупкам Национальной клинической больницы Н., Э.S. C. F, National Clinical H, E. S. C. F. Получение клеток для получения линий человеческих эмбриональных стволовых клеток для терапевтического использования: рекомендации по надлежащей практике. Stem Cell Rev.2012; 8: 91–9.

    PubMed Google Scholar

  • 76.

    Hewitson H, Wood V, Kadeva N, Cornwell G, Codognotto S, Stephenson E, Ilic D. Создание линии эмбриональных стволовых клеток человека исследовательского класса KCL035, несущей мутацию в гене HBB. Stem Cell Res.2016; 16: 210–2.

    CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 77.

    Дейли Г.К., Хен И., Апперли Дж. Ф., Баркер Р. А., Бенвенисти Н., Бреденоорд А. Л., Брейер К. К., Колфилд Т., Сидарс М. И., Фрей-Васконселлс Дж., Хеслоп Х. Э., Джин Й., Ли Р. Т., Маккаб К., Munsie M, Murry CE, Piantadosi S, Rao M, Rooke HM, Sipp D, Studer L, Sugarman J, et al. Установление глобальных стандартов для исследования стволовых клеток и клинического перевода: рекомендации ISSCR 2016 г.Stem Cell Rep. 2016; 6: 787–97.

    Google Scholar

  • 78.

    Такахаши К., Яманака С. Индукция плюрипотентных стволовых клеток из культур эмбриональных и взрослых фибробластов мыши с помощью определенных факторов. Клетка. 2006. 126 (4): 663–76. https://doi.org/10.1016/j.cell.2006.07.024.

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 79.

    Loh YH, Wu Q, Chew JL, Vega VB, Zhang W, Chen X, Bourque G, George J, Leong B., Liu J и др.Транскрипционная сеть Oct4 и Nanog регулирует плюрипотентность в эмбриональных стволовых клетках мыши. Нат Жене. 2006; 38: 431–40.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 80.

    Menasche P, Vanneaux V, Hagege A, Bel A, Cholley B, Cacciapuoti I, Parouchev A, Benhamouda N, Tachdjian G, Tosca L, Trouvin JH, Fabreguettes JR, Bellamy V, Guillemain Coberisbielsel, Suberisbiel , Tartour E, Desnos M, Larghero J. Сердечные предшественники, полученные из человеческих эмбриональных стволовых клеток, для лечения тяжелой сердечной недостаточности: отчет о первом клиническом случае.Eur Heart J. 2015; 36: 2011–7.

    PubMed Google Scholar

  • 81.

    Schwartz SD, Regillo CD, Lam BL, Eliott D, Rosenfeld PJ, Gregori NZ, Hubschman JP, Davis JL, Heilwell G, Spirn M, Maguire J, Gay R, Bateman J, Ostrick RM, Morris D , Vincent M, Anglade E, Del Priore LV, Lanza R. Пигментный эпителий сетчатки, полученный из эмбриональных стволовых клеток человека, у пациентов с возрастной дегенерацией желтого пятна и макулярной дистрофией Штаргардта: наблюдение за двумя открытыми исследованиями фазы 1/2.Ланцет. 2015; 385: 509–16.

    PubMed Google Scholar

  • 82.

    Илич Д., Огилви К. Краткий обзор: эмбриональные стволовые клетки человека — что мы сделали? Что мы делаем? Куда мы идем? Стволовые клетки. 2017; 35: 17–25.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 83.

    Rocha V, et al. Клиническое применение гемопоэтических стволовых клеток пуповинной крови. Пересадка костного мозга Biol.2006; 12 (1): 34–4.

  • 84.

    Лонго У.Г., Ронга М., Маффулли Н. Sports Med Arthrosc 17: 112–126. Тендинопатия ахиллова сухожилия. Sports Med Arthrosc. 2009. 17: 112–26.

    PubMed Google Scholar

  • 85.

    Темпфер Х., Ленер С., Грюц М., Гевольф Р., Травегер А. Биологическая аугментация для восстановления сухожилий: уроки, которые следует извлечь из исследований развития, болезней и стволовых клеток сухожилий. В: Gimble J, Marolt D, Oreffo R, Redl H, Wolbank S, редакторы.Клеточная инженерия и регенерация. Справочная серия по биомедицинской инженерии. Чам: Спрингер; 2017.

  • 86.

    Goldring MB, Goldring SR. Остеоартроз. J. Cell Physiol. 2007; 213: 626–34.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 87.

    Widuchowski W, Widuchowski J, Trzaska T. Дефекты суставного хряща: исследование 25,124 артроскопии коленного сустава. Колено. 2007. 14: 177–82.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 88.

    Li R, Lin Q-X, Liang X-Z, Liu G-B и др. Терапия стволовыми клетками для лечения остеонекроза головки бедренной кости: от клинических применений до соответствующих фундаментальных исследований. Рес-терапия стволовыми клетками. 2018; 9: 291 https://doi.org/10.1186/s13287-018-1018-7.

    Google Scholar

  • 89.

    Gangji V, De Maertelaer V, Hauzeur JP. Имплантация аутологичных клеток костного мозга при лечении нетравматического остеонекроза головки бедренной кости: пятилетнее наблюдение в проспективном контролируемом исследовании.Кость. 2011; 49 (5): 1005–9.

    PubMed Google Scholar

  • 90.

    Чжао Д., Цуй Д., Ван Б., Тиан Ф., Го Л., Ян Л. и др. Лечение остеонекроза головки бедренной кости на ранней стадии аутологичной имплантацией мезенхимальных стволовых клеток, полученных из костного мозга и культивированных. Кость. 2012; 50 (1): 325–30.

    PubMed Google Scholar

  • 91.

    Сен Р.К., Трипати СК, Аггарвал С., Марваха Н., Шарма Р.Р., Ханделвал Н.Ранние результаты основной декомпрессии и инстилляции аутологичных мононуклеарных клеток костного мозга при остеонекрозе головки бедренной кости: рандомизированное контрольное исследование. J Arthroplast. 2012. 27 (5): 679–86.

    Google Scholar

  • 92.

    Lapasset L, Milhavet O, Prieur A, Besnard E, Babled A, Aït-Hamou N, Leschik J, Pellestor F, Ramirez JM, De Vos J, Lehmann S, Lemaitre JM. Омоложение стареющих и столетних клеток человека путем перепрограммирования через плюрипотентное состояние.Genes Dev. 2011; 25: 2248–53.

    CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 93.

    Сахин Э., Депиньо РА. Связывание функционального снижения теломер, митохондрий и стволовых клеток во время старения. Природа. 2010; 464: 520–8.

  • 94.

    Петкович Д.А., Подольский Д.И., Лобанов А.В., Ли С.Г., Миллер Р.А., Гладышев В.Н. Использование профилей метилирования ДНК для оценки воздействия на биологический возраст и долголетие. Cell Metab. 2017; 25: 954–60 https: // doi.org / 10.1016 / j.cmet.2017.03.016.

    CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 95.

    Геронтология, Омоложение путем перепрограммирования клеток: новые горизонты. Родольфо Г. Гойя, Марианна Леманн, Присцила Кьявеллини, Мартина Канателли-Маллат, Клаудиа Б. Херену и Оскар А. Браун. Ресурсотерапия стволовыми клетками . 2018, 9: 349. https://doi.org/10.1186/s13287-018-1075-y.

  • 96.

    Ocampo A, Reddy P, Martinez-Redondo P, Platero-Luengo A, Hatanaka F, Hishida T, Li M, Lam D, Kurita M, Beyret E, Araoka T., Vazquez-Ferrer E, Donoso D. , Роман JLXJ, Родригес-Эстебан Ч., Нуньес Дж., Нуньес Деликадо Э., Кампистол Дж. М., Гильен I, Гильен П., Изписуа.Устранение возрастных признаков in vivo путем частичного перепрограммирования. Клетка. 2016; 167: 1719–33.

    CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 97.

    de Lázaro I, Cossu G, Kostarelos K. Экспрессия транзиторного фактора транскрипции (OSKM) является ключом к клинической трансляции репрограммирования клеток in vivo. EMBO Mol Med. 2017; 9: 733–6.

    PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 98.

    Сунь С, Ли ЗК, Гленсер П, Цай BC, Чжан ХМ, Ян Дж, Ли XR. Акцент на возрастную предрасположенность к возрастной макулопатии 2 аллеля высокого риска дегенерации желтого пятна с помощью технологии стволовых клеток. Stem Cell Res Ther. 2017; 8: 135 https://doi.org/10.1186/s13287-017-0584-4.

    PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 99.

    Лю Дж. Индуцированные нейральные стволовые клетки, полученные из плюрипотентных стволовых клеток: новая надежда на инсульт? Stem Cell Res Ther.2013; 4: 115 https://doi.org/10.1186/scrt326.

    PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 100.

    Шахджалал Х.М., Дайем А.А., Лим К.М., Чон Т.И., Чо С.Г. Генерация β-клеток поджелудочной железы для лечения диабета: достижения и проблемы. Stem Cell ResTher. 2018; 9: 355 https://doi.org/10.1186/s13287-018-1099-3.

    Google Scholar

  • 101.

    Kroon E, Martinson LA, et al.Энтодерма поджелудочной железы, полученная из эмбриональных стволовых клеток человека, генерирует инсулин-секретирующие клетки, чувствительные к глюкозе, in vivo. Nat Biotechnol. 2008; 26; 443–52.

  • 102.

    Arora V, Pooja A, Munshi AK. Сохранение стволовых клеток из слущенных временных зубов человека. J Clin Pediatr Dent. 2009. 33 (4): 289–94.

    PubMed Google Scholar

  • 103.

    Mao JJ. Стволовые клетки и будущее стоматологической помощи. New York State Dental J. 2008; 74 (2): 21–4.

    Google Scholar

  • 104.

    Reznick, Jay B. Непрерывное образование: стволовые клетки: новые медицинские и стоматологические методы лечения для профессиональных стоматологов. Журнал Денталтаун . 2008, стр. 42–53.

  • 105.

    Артур А., Рычков Г., Ши С., Коблар С.А., Гронтос С. Стволовые клетки пульпы зуба взрослого человека дифференцируются в сторону функционально активных нейронов при соответствующих сигналах окружающей среды. Стволовые клетки. 2008. 26 (7): 1787–95.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 106.

    Кордейро М.М., Донг З., Канеко Т., Чжан З., Миядзава М., Ши С., Смит А. Инженерия ткани пульпы зубов со стволовыми клетками из расслоенных. Дж. Эндод. 2008. 34 (8): 962–9.

    PubMed Google Scholar

  • 107.

    Хаяши К., Охта Х., Куримото К., Арамаки С., Сайтоу М. Восстановление пути спецификации зародышевых клеток мыши в культуре с помощью плюрипотентных стволовых клеток.Клетка. 2011. 146 (4): 519–32. https://doi.org/10.1016/j.cell.2011.06.052.

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 108.

    Садри-Ардекани Х., Атала А. Криоконсервация ткани яичка и трансплантация сперматогониальных стволовых клеток для восстановления фертильности: от скамьи к постели. Stem Cell ResTher. 2014; 5: 68 https://doi.org/10.1186/scrt457.

    Google Scholar

  • 109.

    Zhang Q, Xu M, Yao X, Li T, Wang Q, Lai D. Амниотические эпителиальные клетки человека подавляют апоптоз гранулезных клеток, вызванный химиотерапией, и восстанавливают фертильность. Stem Cell Res Ther. 2015; 6: 152 https://doi.org/10.1186/s13287-015-0148-4.

    PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 110.

    Ма Д.К., Бонагиди М.А., Мин Г.Л., Сонг Х. Взрослые нервные стволовые клетки в центральной нервной системе млекопитающих. Cell Res. 2009; 19: 672–82. https: // doi.org / 10.1038 / cr.2009.56.

    CAS Статья PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 111.

    Dantuma E, Merchant S, Sugaya K. Стволовые клетки для лечения нейродегенеративных заболеваний. Stem Cell ResTher. 2010; 1:37 https://doi.org/10.1186/scrt37.

    Google Scholar

  • 112.

    Ван Кью, Мацумото Ю., Синдо Т., Мияке К., Синдо А., Каваниси М., Кавай Н., Тамия Т., Нагао С.Трансплантация нервных стволовых клеток в кортекс на мышиной модели болезни Альцгеймера. J Med Invest. 2006; 53: 61–9. https://doi.org/10.2152/jmi.53.61.

    Артикул PubMed Google Scholar

  • 113.

    Moghadam FH, Alaie H, Karbalaie K, Tanhaei S, Nasr Esfahani MH, Baharvand H. Трансплантация примированных или непраймированных нейронных клеток-предшественников эмбриональных стволовых клеток мыши улучшает когнитивные функции у крыс с болезнью Альцгеймера. Дифференциация.2009. 78: 59–68. https://doi.org/10.1016/j.diff.2009.06.005.

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 114.

    Byrne JA. Разработка методов лечения нейродегенеративных заболеваний на основе нервных стволовых клеток. Stem Cell ResTher. 2014; 5: 72. https://doi.org/10.1186/scrt461.

    Google Scholar

  • 115.

    Awe JP, Lee PC, Ramathal C, Vega-Crespo A, Durruthy-Durruthy J, Cooper A, Karumbayaram S, Lowry WE, Clark AT, Zack JA, Sebastiano V, Kohn DB, Pyle AD, Martin MG, Lipshutz GS, Phelps PE, Pera RA, Byrne JA.Создание и характеристика свободных от трансгенов человеческих плюрипотентных стволовых клеток и преобразование в предполагаемый клинический статус. Stem Cell Res Ther. 2013; 4: 87. https://doi.org/10.1186/scrt246.

    CAS Статья PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 116.

    Пэн Дж., Цзэн X. Роль индуцированных плюрипотентных стволовых клеток в регенеративной медицине: нейродегенеративные заболевания. Stem Cell ResTher. 2011; 2:32. https: // doi.org / 10.1186 / scrt73.

    CAS Google Scholar

  • 117.

    Райт Б.Л., Баркер Р.А. Созданные и новые методы лечения болезни Хантингтона. 2007; 7 (6): 579–87 https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/17896994/579-87.

  • 118.

    Lin NH, Gronthos S, Bartold PM. Стволовые клетки и регенерация пародонта. Ост Дент Дж. 2008; 53: 108–21.

    PubMed Google Scholar

  • 119.

    Seo BM, Miura M, Gronthos S, Bartold PM, Batouli S, Brahim J и др. Исследование мультипотентных постнатальных стволовых клеток пародонтальной связки человека. Ланцет. 2004; 364: 149–55.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 120.

    Ramseier CA, Abramson ZR, Jin Q, Giannobile WV. Генная терапия для регенеративной медицины пародонта. Dent Clin North Am. 2006; 50: 245–63.

    PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 121.

    Ши С., Бартольд П.М., Миура М., Сео Б.М., Роби П.Г., Гронтос С. Эффективность мезенхимальных стволовых клеток для регенерации и восстановления зубных структур. OrthodCraniofac Res. 2005; 8: 191–9.

    CAS Google Scholar

  • 122.

    Йохара К., Накашима М., Ито М., Исикава М., Накасима А., Акамине А. Регенерация дентина с помощью терапии стволовыми клетками пульпы зуба с рекомбинантным морфогенетическим белком кости человека. J Dent Res. 2004; 83: 590–5.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 123.

    Ху Б., Унда Ф, Бопп-Кучлер С., Хименес Л., Ван XJ, Хайкель Ю. и др. Клетки костного мозга могут давать начало амелобластоподобным клеткам. J Dent Res. 2006; 85: 416–21.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 124.

    Liu Y, Liu W, Hu C, Xue Z, Wang G, Ding B, Luo H, Tang L, Kong X, Chen X, Liu N, Ding Y, Jin Y. MiR-17 модулирует остеогенный дифференцировка через связную петлю прямой связи в мезенхимальных стволовых клетках, выделенных из пародонтальных связок пациентов с пародонтитом.Стволовые клетки. 2011. 29 (11): 1804–16. https://doi.org/10.1002/stem.728.

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 125.

    Raspini G, Wolff J, Helminen M, Raspini G, Raspini M, Sándor GK. Стволовые клетки, полученные из третьих моляров, в сочетании с биоактивным стеклом могут вызывать признаки костеобразования in vitro. J Oral Maxillofac Res. 2018; 9 (1): e2. Опубликовано 31 марта 2018 г. https://doi.org/10.5037/jomr.2018.9102.

  • 126.

    Christodoulou I, Goulielmaki M, Devetzi M, Panagiotidis M, Koliakos G, Zoumpourlis V. Мезенхимальные стволовые клетки в доклинической цитотерапии рака: систематический обзор. Stem Cell Res Ther. 2018; 9 (1; 336). https://doi.org/10.1186/s13287-018-1078-8.

  • 127.

    Бансал Р., Джайн А. Текущий обзор применения стоматологических стволовых клеток в регенеративной стоматологии. J Nat Sci Biol Med. 2015; 6 (1): 29–34. https://doi.org/10.4103/0976-9668.149074.

    Артикул PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 128.

    Эдгар Ледесма-Мартинес, Виктор Мануэль Мендоса-Нуньес, Эдельмиро Сантьяго-Осорио. Мезенхимальные стволовые клетки, полученные из пульпы зуба: обзор. Стволовые клетки Инт . 2016, 4,709,572, стр. doi: https://doi.org/10.1155/2016/4709572].

  • 129.

    Grzech-Leśniak K. Использование лазеров в лечении пародонта: новый золотой стандарт? Photomed Laser Surg. 2017; 35 (10): 513–4.

    PubMed Google Scholar

  • 130.

    Миура М., Гронтос С., Чжао М., Лу Б., Фишер Л. В., Роби П. Г., Ши С.SHED: стволовые клетки слущенных временных зубов человека. Proc Natl Acad Sci U S. A. 2003; 100 (10): 5807–12. https://doi.org/10.1073/pnas.0937635100.

    CAS Статья PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 131.

    Ясуи Т., Мабучи И., Торими Х., Эбине Т., Ниибе К., Хулихан Д.Д., Морикава С., Онидзава К., Кавана Х., Акадзава С., Судзуки Н., Накагава Т., Окано Х., Мацудзаки Ю. Очищенный человек. стволовые клетки пульпы зуба способствуют остеогенной регенерации.J Dent Res. 2016; 95 (2): 206–14. https://doi.org/10.1177/0022034515610748.

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 132.

    Ямамото А., Сакаи К., Мацубара К., Кано Ф., Уэда М. Многогранная нейро-регенеративная активность стволовых клеток пульпы зуба человека для функционального восстановления после травмы спинного мозга. Neurosci Res. 2014; 78: 16–20. https://doi.org/10.1016/j.neures.2013.10.010.

    Артикул PubMed Google Scholar

  • 133.

    d’Aquino R, De Rosa A, Lanza V, Tirino V, Laino L, Graziano A, Desiderio V, Laino G, Papaccio G. Восстановление дефекта кости нижней челюсти человека путем трансплантации стволовых клеток пульпы / клеток-предшественников и биокомплексов коллагеновой губки . Eur Cell Mater. 2009; 12, PMID: 19

    6: 75–83.

    Google Scholar

  • 134.

    Ван Л., Шен Х, Чжэн В., Тан Л., Ян З, Гао Ю., Ян Ц., Ван С., Дуань Ю., Цзинь Ю. Характеристика стволовых клеток из альвеолярной периодонтальной связки.Tissue Eng. Часть A. 2011; 17 (7–8): 1015–26. https://doi.org/10.1089/ten.tea.2010.0140.

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 135.

    Ивата Т., Ямато М., Чжан З., Мукобата С., Вашио К., Андо Т., Фейен Дж., Окано Т., Исикава И. Валидация человеческих клеток, полученных из периодонтальной связки, как надежного источника для цитотерапии. J Clin Periodontol. 2010. 37 (12): 1088–99. https://doi.org/10.1111/j.1600-051X.2010.01597.x.

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 136.

    Chen F-M, Gao L-N, Tian B-M, Zhang X-Y, Zhang Y-J, Dong G-Y, Lu H и др. Лечение внутрикостных дефектов пародонта с использованием аутологичных стволовых клеток периодонтальной связки: рандомизированное клиническое исследование. Stem Cell Res Ther. 2016; 7:33. https://doi.org/10.1186/s13287-016-0288-1.

    Артикул PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 137.

    Бакопулу А., Лейхаузен Г., Фольк Дж., Цифтсоглоу А., Гарефис П., Коидис П., Геуртсен В.Сравнительный анализ in vitro остео / одонтогенного потенциала дифференцировки стволовых клеток пульпы человека (DPSC) и стволовых клеток апикального сосочка (SCAP). Arch Oral Biol. 2011. 56 (7): 709–21. https://doi.org/10.1016/j.archoralbio.2010.12.008.

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 138.

    Han C, Yang Z, Zhou W, Jin F, Song Y, Wang Y, Huo N, Chen L, Qian H, Hou R, Duan Y, Jin Y. Стволовые клетки периапикального фолликула: многообещающий кандидат для регенерации цемента / пародонтальной связки и биокорневой инженерии.Stem Cells Dev. 2010. 19 (9): 1405–15. https://doi.org/10.1089/scd.2009.0277.

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 139.

    Luan X, Ito Y, Dangaria S, Diekwisch TG. Неоднородность клеток-предшественников зубных фолликулов в развивающемся периодонте мыши. Stem Cells Dev. 2006. 15 (4): 595–608. https://doi.org/10.1089/scd.2006.15.595.

    CAS Статья PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 140.

    Ханда К., Сайто М., Цунода А., Ямаути М., Хаттори С., Сато С., Тойода М., Теранака Т., Нараянан А.С. Клетки-предшественники из зубного фолликула способны образовывать цементный матрикс in vivo. Connect Tissue Res. 2002; 43 (2–3): 406–8 PMID: 12489190.

    PubMed Google Scholar

  • 141.

    Гуо В., Чен Л., Гонг К., Дин Б., Дуань Ю., Цзинь Ю. Гетерогенные клетки зубных фолликулов и регенерация сложных тканей пародонта. Тканевая инженерия.Часть A. 2012; 18 (5–6): 459–70 https://doi.org/10.1089/ten.tea.2011.0261.

    CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 142.

    Bai, Yudi et al. Формирование ткани, подобной цементу и периодонтальной связке, слоями клеток зубных фолликулов, совместно культивируемых с клетками эпителиальной оболочки корня Гертвига. Кость. 2011, 48, выпуск 6, с. 1417–1426, https://doi.org/10.1016/j.bone.2011.02.016.

  • 143.

    Кордейро М.М., Донг З., Канеко Т., Чжан З., Миядзава М., Ши С. и др.Инженерия тканей пульпы зубов стволовыми клетками слущенных молочных зубов. 2008, 34, стр. 962–969.

  • 144.

    Доби К., Смит Дж., Слоан А.Дж., Смит А.Дж.. Влияние альгината, гидрогелей и TGF-бета 1 на восстановление пульпы человеческого зуба in vitro. Connect Tissue Res 2. 2002; 43: 387–90.

    CAS Google Scholar

  • 145.

    Friedlander LT, Cullinan MP, Love RM. Стволовые клетки зубов и их потенциальная роль в апексогенезе и апексификации.Инт Эндод Дж. 2009; 42: 955–62.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 146.

    Цай Дж, Чжан И, Лю П, Чен С., Ву Х, Сунь И, Ли А, Хуан К., Ло Р, Ван Л., Лю И, Чжоу Т, Вэй С., Пан Г, Пей Д. , Генерация зубоподобных структур из свободных от интеграции плюрипотентных стволовых клеток, индуцированных мочой человека. Cell Regen (Лондон). 30 июля 2013 г., 2 (1), стр. 6, DOI: https://doi.org/10.1186/2045-9769-2-6.

  • 147.

    Крейг Дж. Тейлор, Элеонора М.Болтон и Дж. Эндрю Брэдли, 12 августа 2011 г. и https://doi.org/10.1098/rstb.2011.0030], 366 (1575): 2312–2322. [doi :. Иммунологические аспекты банка эмбриональных и индуцированных плюрипотентных стволовых клеток. Philos Trans R SocLond B Biol Sci. 2011, 366 (1575), стр. 2312–2322, DOI: https: //doi.org/10.1098/rstb.2011.0030.

  • 148.

    T.R. Наяк, Х. Андерсен, В. Макам, К. Хоу, С. Бэ, X.F. Сюй, P.L.R. Ee, J.H. Ан, Б. Хонг, Г. Пасторин, Б. Озилмаз, ACS Nano, 5 (6) (2011), стр. 4. Графен для контролируемой и ускоренной остеогенной дифференцировки мезенхимальных стволовых клеток человека.САУ Нано. 2011. С. 4670–4678.

  • 149.

    Ли В.К., Лим К., Ши Х, Тан ЛАЛ, Ван И, Лим Коннектикут, Ло КП. Происхождение усиленного роста и дифференцировки стволовых клеток на графене и оксиде графена. САУ Нано. 2011; 5 (9): 7334–41.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 150.

    Kenry LWC, Loh KP, Lim CT. Когда стволовые клетки встречаются с графеном: возможности и проблемы регенеративной медицины. Биоматериалы. 2018; 155: 236–50.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 151.

    Юань А., Фарбер Е.Л., Рапопорт А.Л., Техада Д., Денискин Р., Ахмедов Н.Б. и др. Перенос микроРНК микровезикулами эмбриональных стволовых клеток. 2009. 2009, 4 (3), с. https://doi.org/10.1371/journal.pone. 0004722.

  • 152.

    Oh, Myeongsik, et al. Экзосомы, полученные из индуцированных человеком плюрипотентных стволовых клеток, улучшают старение фибробластов кожи. Int. J. Mol. Sci. 2018, 19 (6), с. 1715.

  • 153.

    Ramirez MI. и другие. Технические проблемы работы с внеклеточными везикулами.Наноразмер. 2018; 10: 881–906.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 154.

    Valadi H, et al. Опосредованный экзосомами перенос мРНК и микроРНК — это новый механизм генетического обмена между клетками. Nat. Cell Biol. 2007; 9: 654–9.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 155.

    Mateescu B, et al. Препятствия и возможности в функциональном анализе РНК внеклеточных везикул — позиционный документ ISEV.J. Extracell. Везикулы. 2017; 6 (1). https://doi.org/10.1080/20013078.2017.1286095.

  • 156.

    Nawaz M, et al. Внеклеточные везикулы: развивающиеся факторы в биологии стволовых клеток. Stem Cells Int. 2016; 2016: 17. Идентификатор статьи 1073140.

  • 157.

    Helfrich, Y.R., Sachs, D.L. и Вурхиз, Дж. Дж. Обзор старения кожи и фотостарения. Дерматол. Nurs. 20. С. 177–183, https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/18649702.

  • 158.

    Джулия Тиггес, Жан Крутманн, Эллен Фриче, Юдит Хенделер, Хайнер Шааль, Йенс В.Фишер, Фаиза Кальфала, Ханс Рейнке, Гвидо Райфенбергер, Кай Штюлер, Наташия Вентура, Сабрина Гундерманн, Петра Букамп, Фриц Боэге. Признаки старения фибробластов, механизмы старения и развития, 138, 2014, страницы 26–44. 2014, 138, с. 26–44, ISSN 0047–6374, https://doi.org/10.1016/j.mad.2014.03.004.

  • 159.

    Huh MI, Kim MS, Kim HK, et al. Влияние кондиционированной среды, собранной из стволовых клеток, полученных из околоплодных вод человека (hAFSC), на регенерацию кожи и фотостарение.Tissue Eng Regen Med. 2014; 11: 171 https://doi.org/10.1007/s13770-014-0412-1.

    Google Scholar

  • 160.

    Togel F, Hu Z, Weiss K, et al. Вводимые мезенхимальные стволовые клетки защищают от острой ишемической почечной недостаточности посредством механизмов, не зависящих от дифференцировки. Am J Physiol Renal Physiol. 2005; 289: F31.

    PubMed Google Scholar

  • 161.

    Лю Дж, Хан Г, Лю Х и др.Подавление роста клеток холангиокарциномы мезенхимальными стволовыми клетками пуповины человека: возможная роль передачи сигналов Wnt и Akt. PLoS One. 2013; 8: e62844.

    CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 162.

    Oh M, et al. Промотирующие эффекты среды, обусловленной плюрипотентными стволовыми клетками человека, на пролиферацию и миграцию дермальных фибробластов. Biotechnol. Bioprocess Eng. 2017; 22: 561–8.

    CAS Google Scholar

  • 163.

    Chen L, Tredget EE, Wu PY, Wu Y. Паракринные факторы мезенхимальных стволовых клеток привлекают макрофаги и клетки эндотелиального происхождения и улучшают заживление ран. PloS One. 2008; 3: e1886.

    PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 164.

    Пэ Дж.С., Ли С.Х., Ким Дж.и., Чхве Дж.и., Пак Р-У, Пак Дж.Й., Пак Х-С, Сон Й-С, Ли Д.-С, Ли Э.Б. βig-h4 поддерживает адгезию, миграцию и пролиферацию кератиноцитов через интегрин α3β1. Biochem.Биофиз. Res. Commun. 2002; 294: 940–8.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 165.

    Zhou BR, Xu Y, Guo SL, Xu Y, Wang Y, Zhu F, Permatasari F, Wu D, Yin ZQ, Luo D. Влияние кондиционированной среды стволовых клеток, полученных из жировой ткани, на заживление ран после абляционной шлифовки фракционным углекислотным лазером. BioMed Res. Int. 2013; 519: 126.

    Google Scholar

  • 166.

    Peng Y, Baulier E, Ke Y, Young A, Ahmedli NB, Schwartz SD, et al. Внеклеточные везикулы эмбриональных стволовых клеток человека и их влияние на иммортализованные клетки Мюллера сетчатки человека. PLoS ONE. 2018, 13 (3), с. https://doi.org/10.1371/journal.pone.019400.

  • 167.

    Харрис М.Т., Батлер Д.Л., Бойвин Г.П., Флорер Дж.Б., Шанц Е.Дж., Венструп Р.Дж. Мезенхимальные стволовые клетки, используемые для восстановления сухожилий кролика, могут образовывать эктопическую кость и выражать активность щелочной фосфатазы в конструкциях. J Orthop Res.2004; 22: 998–1003.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 168.

    Mascetti VL, Pedersen RA. Химеризм человека и мыши подтверждает плюрипотентность стволовых клеток человека. Стволовая клетка. 2016; 18: 67–72.

    CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 169.

    Gandia C, Armiñan A, García-Verdugo JM, Lledó E, Ruiz A, Miñana MD, Sanchez-Torrijos J, Payá R, Mirabet V, Carbonell-Uberos F, Llop M, Montero JA, Sepúlveda P .Стволовые клетки пульпы зуба человека улучшают функцию левого желудочка, вызывают ангиогенез и уменьшают размер инфаркта у крыс с острым инфарктом миокарда. Стволовые клетки. 2007. 26 (3): 638–45.

    PubMed Google Scholar

  • 170.

    Perry BC, Zhou D, Wu X, Yang FC, Byers MA, Chu TM, Hockema JJ, Woods EJ, Goebel WS. Сбор, криоконсервация и характеристика мезенхимальных стволовых клеток, полученных из пульпы зуба человека, для банковского и клинического использования.Tissue Eng Часть C Методы. 2008. 14 (2): 149–56.

    CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 171.

    Гарсия-Олмо Д., Гарсия-Арранс М., Эррерос Д. и др. Фаза I клинических испытаний лечения свища Крона трансплантацией мезенхимальных стволовых клеток жировой ткани. Dis Colon Rectum. 2005; 48: 1416–23.

    PubMed Google Scholar

  • 172.

    de Mendonça CA, Bueno DF, Martins MT, Kerkis I, Kerkis A, Fanganiello RD, Cerruti H, Alonso N, Passos-Bueno MR.Реконструкция больших черепных дефектов в эксперименте без иммуносупрессии с использованием стволовых клеток пульпы зуба человека. J Craniofac Surg. 2008. 19 (1): 204–10.

    Google Scholar

  • 173.

    Seo BM, Sonoyama W, Yamaza T, Coppe C, Kikuiri T, Akiyama K, Lee JS, Shi S. SHED устраняет критические дефекты свода черепа у мышей. Oral Dis. 2008. 14 (5): 428–34.

    CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 174.

    Аббас, Дьяконов И., Шарп П. Происхождение зубных стволовых клеток нервным гребнем. Панъевропейская федерация Международной ассоциации стоматологических исследований (PEF IADR). 2008, Тт. Seq # 96 — Стволовые клетки полости рта.

  • 175.

    Керкис И., Амбросио К.Э., Керкис А., Мартинс Д.С., Гайад Т.П., Морини А.С., Виейра Н.М., Марина П. и др. Ранняя трансплантация незрелых стволовых клеток пульпы зуба человека из молочных зубов собакам с мышечной дистрофией золотистого ретривера (GRMD). J Transl Med. 2008; 6: 35.

    PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 176.

    Сянжуй Ян, Ли Ли, Ли Сяо, Дунхуэй Чжан. Утилизируйте упаковку стоматологической феи: обзор стволовых клеток пульпы зуба. Стволовые клетки Res Ther . 2018, 9, 1, 1. https://doi.org/10.1186/s13287-018-1094-8.

  • 177.

    Wang J, Wang X, Sun Z, Wang X, Yang H, Shi S, Wang S. Стволовые клетки молочных зубов, слущившиеся у человека, могут дифференцироваться в дофаминергические нейроноподобные клетки. Stem Cells Dev. 2010; 19: 1375–83.

    CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 178.

    Wang J, et al. Одонтогенная дифференцировка стволовых клеток пульпы зуба человека на нановолоконных каркасах из поли (L-молочной кислоты) in vitro и in vivo. Acta Biomater. 2010. 6 (10): 3856–63.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 179.

    Дэвис О.Г., Купер П.Р., Шелтон Р.М., Смит А.Дж., Схевен Б.А. Сравнение минерализации in vitro и дентиногенного потенциала мезенхимальных стволовых клеток, полученных из жировой ткани, костного мозга и пульпы зуба.J Bone Miner Metab. 2015; 33: 371–82.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 180.

    Huang GT-J, Шаграманова К., Чан SW. Формирование одонтобластоподобных клеток из культивированных клеток пульпы зуба человека на дентине in vitro. Дж. Эндод. 2006; 32: 1066–73.

    PubMed Google Scholar

  • 181.

    Ши С., Роби П.Г., Гронтос С. Сравнение пульпы зуба человека и стромальных стволовых клеток костного мозга с помощью анализа микроматрицы кДНК.Кость. 2001. 29 (6): 532–9.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 182.

    Гронтос С., Манкани М., Брахим Дж., Роби П.Г., Ши С. Постнатальные стволовые клетки пульпы зуба человека (ДПСК) in vitro и in vivo. Proc Natl Acad Sci U S. A. 2000; 97: 13625–30.

    CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 183.

    Nuti N, Corallo C, Chan BMF, Ferrari M, Gerami-Naini B.Мультипотентная дифференцировка стволовых клеток пульпы зуба человека: обзор литературы. Stem Cell Rev Rep. 2016; 12: 511–23.

    CAS Google Scholar

  • 184.

    Ferro F, et al. Дифференцировка стволовых клеток пульпы зуба открывает новые возможности для понимания динамики Oct4A. PloS One. 2012; 7 (7): e41774.

  • 185.

    Conde MCM, Chisini LA, Grazioli G, Francia A, Carvalho RVd, Alcázar JCB, Tarquinio SBC, Demarco FF. Влияет ли криоконсервация на биологические свойства стволовых клеток из тканей зубов? Систематический обзор.Браз Дент Дж. 2016; 1210 (6): 633-40. https://doi.org/10.1590/0103-6440201600980.

  • 186.

    Papaccio G, Graziano A, d’Aquino R, Graziano MF, Pirozzi G, Menditti D, De Rosa A, Carinci F, Laino G. Долгосрочная криоконсервация стволовых клеток пульпы зуба (SBP-DPSCs) и их дифференцированные остеобласты: источник клеток для восстановления тканей. J. Cell Physiol. 2006; 208: 319–25.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 187.

    Alge DL, Zhou D, Adams LL, et.al. Соответствующее донору сравнение стволовых клеток пульпы зуба и мезенхимальных стволовых клеток костного мозга на модели крыс. J Tissue Eng Regen Med. 2010. 4 (1): 73–81.

  • 188.

    Джо Й-И, Ли Х-Дж, Кук С.-И, Чонг Х-В, Пак Дж-И, Чунг Дж-Х, Чунг И-Х, Ким Э-С, Ян Х-С, Чунг П-Х. Выделение и характеристика постнатальных стволовых клеток из тканей зубов человека. Tissue Eng. 2007; 13: 767–73.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 189.

    Gronthos S, Brahim J, Li W, Fisher LW, Cherman N, Boyde A, DenBesten P, Robey PG, Shi S. Свойства стволовых клеток стволовых клеток пульпы зуба человека. J Dent Res. 2002; 81: 531–5.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 190.

    Laino G, d’Aquino R, Graziano A, Lanza V, Carinci F, Naro F, Pirozzi G, Papaccio G. Новая популяция стволовых клеток пульпы зуба взрослого человека: полезный источник живых аутологичных волокнистых костная ткань (LAB). J Bone Miner Res.2005; 20: 1394–402.

    PubMed Google Scholar

  • 191.

    Зайнал А., Шахрул Х. и др. Изучение трансформации хондрогенеза in vitro стволовых клеток пульпы зуба мыши. Научный мир J. 2012; 2012: 827149.

  • 192.

    Wei X, et al. Экспрессия маркеров минерализации в клетках пульпы зуба. Дж. Эндод. 2007. 33 (6): 703–8.

    PubMed Google Scholar

  • 193.

    Dai J, et al.Влияние совместного культивирования костальных хондроцитов и стволовых клеток пульпы зуба в сочетании с экзогенным белком FGF9 на хондрогенез и оссификацию в сконструированном хряще. Биоматериалы. 2012. 33 (31): 7699–711.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 194.

    Vasandan AB, et al. Функциональные отличия мезенхимальных стромальных клеток от пульпы зуба человека и периодонтальной связки. J Cell Mol Med. 2014. 18 (2): 344–54.

    CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 195.

    Werle SB, et al. Кариозные молочные зубы являются потенциальным источником стволовых клеток пульпы зуба. Clin Oral Investig. 2015; 20: 75–81.

    PubMed Google Scholar

  • 196.

    Nemeth CL, et al. Усиление хондрогенной дифференцировки стволовых клеток пульпы зуба с использованием гидрогелей PEG-GelMA-HA с нанопокрытием. Tissue Eng A. 2014; 20 (21–22): 2817–29.

    CAS Google Scholar

  • 197.

    Пайно Ф., Риччи Дж., Де Роса А., Д’Акино Р., Лайно Л., Пироцци Дж. И др. Экто-мезенхимальные стволовые клетки пульпы зуба способны дифференцироваться в активные меланоциты. Евро. Cell Mater. 2010. 20: 295–305.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 198.

    Ferro F, Spelat R, Baheney CS. Выделение, характеристика и дифференциация стволовых клеток пульпы зуба (DPSC). В: Kioussi C, редактор. Восстановление стволовых клеток и тканей. Методы молекулярной биологии (методы и протоколы): Humana Press.2014; 1210.

  • 199.

    Ишкитиев Н., Яэгаки К., Имаи Т., Танака Т., Накахара Т., Исикава Х., Митев В., Хаапасало М. Высокочистые линии печени, дифференцированные из стволовых клеток пульпы зуба в бессывороточной среде. Дж. Эндод. 2012; 38: 475–80.

    PubMed Google Scholar

  • 5 вкладов клеток HeLa в науку

    В 1951 году в возрасте всего 31 года Генриетта Лакс умерла от агрессивной формы рака шейки матки, всего через 10 месяцев после первого обращения за лечением в Johns Hopkins по поводу «узла» в утробе матери.Во время лечения в больнице у нее были взяты образцы раковой ткани шейки матки. Эти клетки стали бессмертной линией клеток, известной как HeLa.

    В последующие годы клетки HeLa позволили ученым всего мира совершить большие скачки в науке и медицине. В этом списке выделены пять из этих замечательных достижений.

    1. Ликвидация полиомиелита

    Джонас Солк разработал вакцину против полиомиелита в начале 1950-х годов, но изо всех сил пытался найти способ проверить ее в полевых условиях, поскольку традиционно используемые клетки макака-резуса были слишком дороги для такого крупномасштабного исследования.В 1952 году было обнаружено, что клетки HeLa чувствительны к полиомиелиту, но не погибают от него, что делает их идеальным источником клеток-хозяев. В Университете Таскиги была открыта лаборатория по производству культур клеток HeLa, которая на пике своего развития поставляла около 20 000 пробирочных культур в неделю. В настоящее время мы находимся на 99% пути к искоренению полиомиелита во всем мире.


    2. Усовершенствованные методы культивирования клеток

    Во время массового производства и распространения клеток HeLa для тестирования вакцины против полиомиелита в Университете Таскиги ведущие исследователи Браун и Хендерсон первыми разработали новые протоколы культивирования клеток, такие как использование покрытых резиной крышек с завинчивающимися крышками. бутылки и пробирки и строгие меры контроля качества.Чувствительная к температуре природа клеток HeLa также побудила исследователей использовать несколько инкубаторов и внедрить новые решения для транспортировки, такие как Equitherm и изолированные транспортные контейнеры.

    После открытия Гартлером того факта, что клетки HeLa могут перемещаться по воздуху и заражать другие культуры, были внесены значительные улучшения в методы культивирования клеток, чтобы предотвратить дальнейшее дорогостоящее перекрестное заражение.


    3. Подсчет хромосом

    Ребекка Склут описывает в своей книге Бессмертная жизнь Генриетты Лакс , как перемешивание лаборатории в Техасе в 1953 году случайно позволило исследователям четко увидеть и подсчитать каждую хромосому в клетках HeLa, которыми они были. работать с.После этого открытия Тиджо и Леван разработали метод окрашивания и подсчета хромосом, продемонстрировав, что соматические клетки человека имеют 23 пары хромосом, а не 24 пары хромосом, как считалось ранее. Это имело важные последствия для медицинской диагностики, поскольку связаны отклонения от 23 пар хромосом. с различными генетическими заболеваниями, например трисомией 21 и синдромом Дауна.


    4. Картирование генома


    Харрис и Уоткинс создали первые гибриды человека и животных в 1965 году путем слияния клеток HeLa с клетками мыши.Несмотря на опасения и неуверенность широкой публики в то время, это достижение позволило значительно продвинуться в картировании генов на определенные хромосомы, а в более поздние годы — в проекте «Геном человека».

    5. Вакцины против вируса папилломы человека (ВПЧ)


    В 1980-х годах Харальд цур Хаузен обнаружил, что клетки Генриетты содержат ВПЧ-18, который позже получил Нобелевскую премию за открытие, связывающее ВПЧ и рак шейки матки. Последующая работа привела к разработке вакцин против ВПЧ, которые сейчас используются во многих странах для защиты молодых девушек от развития инфекций ВПЧ, связанных с раком шейки матки.По оценкам, вакцинация против ВПЧ поможет снизить количество смертей от рака шейки матки на 70%.

    В дополнение к этим пяти примерам, клетки HeLa были задействованы во многих других новаторских достижениях в науке и медицине, начиная от первых клеток, которые были успешно клонированы, и заканчивая первыми человеческими клетками, отправленными в космос. Клетки HeLa по-прежнему широко используются в лабораториях, поэтому вполне вероятно, что их вклад будет продолжать расти.

    Праймер для молекулярных выражений для микроскопии: специализированные методы микроскопии — Галерея цифровых изображений флуоресценции


    Галерея цифровых изображений флуоресценции
    Клетки фибробластов легких плода человека (линия MRC-5)

    Клеточная линия MRC-5 обычно используется при разработке вакцин, в качестве хозяина для трансфекции в вирусологических исследованиях и для тестирования цитотоксичности in vitro .Основанная в сентябре 1966 года Дж. П. Джейкобсом, эта клеточная линия была получена из ткани легких 14-недельного плода мужского пола, прерванного от 27-летней женщины.

    Клетки

    MRC-5, которые прикрепляются к культуре и демонстрируют морфологию фибробластов, могут удвоиться в размере от 42 до 46 раз до начала старения. Они восприимчивы к полиовирусу 1, простому герпесу и везикулярному стоматиту (штамм Indiana). Однако линия отрицательна по обратной транскриптазе, что указывает на отсутствие целостных геномов ретровирусов.

    С тех пор, как возросла осведомленность о террористических угрозах в Соединенных Штатах, клеточная линия MRC-5 стала объектом более пристального внимания из-за ее роли в приготовлении противооспенных вакцин. Вакцинация от оспы не требовалась в стране с начала 1970-х годов, потому что в Соединенных Штатах эта болезнь была почти полностью ликвидирована. Однако оспа, которая вызывается вирусом, известным как Variola major , в настоящее время считается чрезвычайно опасным потенциальным биологическим оружием, поскольку она легко передается от человека к человеку, и лишь немногие люди обладают полным иммунитетом к ней.Доказано, что вакцины против оспы очень эффективны в предотвращении заражения и в снижении тяжести заболевания у тех, кто подвергся воздействию без защиты. Таким образом, делается попытка обеспечить наличие достаточного количества вакцин для всех жителей в случае возникновения вспышки. Многие из новых вакцин производятся с использованием клеточной линии MRC-5, а не клеток кожи теленка, которые служили основой для многих старых противооспенных вакцин.

    Культура клеток фибробластов легких плода человека (MRC-5), представленная на цифровом изображении выше, была помечена агглютинином зародышей пшеницы, лектином, который нацелен на гликопротеины в сети Гольджи, конъюгированный с Texas Red-X.Кроме того, клетки метили в отношении цитоскелетной F-актиновой сети и ДНК с помощью Alexa Fluor 488, конъюгированной с фаллоидином и DAPI, соответственно. Изображения были записаны в оттенках серого с помощью системы камеры QImaging Retiga Fast-EXi, соединенной с микроскопом Olympus BX-51, оснащенным оптическими блоками полосно-эмиссионного флуоресцентного фильтра, предоставленными Omega Optical. На этапе обработки отдельные каналы изображения были псевдоцветны со значениями RGB, соответствующими каждому из спектральных профилей излучения флуорофора.

    Дополнительные изображения флуоресценции клеток фибробластов легких плода человека (MRC-5)

    Клетки MRC-5 с Cy3, Alexa Fluor 488 и Hoechst 33258 — Культура клеток фетальных фибробластов легких человека была окрашена Alexa Fluor 488, конъюгированной с фаллоидином, который нацелен на филаментозный актин цитоскелета, и Hoechst 33258, который связывается с ДНК в ядрах клеток. Клетки MRC-5 также иммунофлуоресцентно метили мышиными моноклональными первичными антителами против тубулина, за которыми следовали козьи антимышиные фрагменты Fab , конъюгированные с Cy3, нацеленные на внутриклеточную сеть микротрубочек.

    Визуализация структурных особенностей комплекса и ядра Гольджи в клетках фибробластов легких человека — Чтобы изучить структурные особенности комплекса и ядра Гольджи при относительно большом увеличении, культуру клеток MRC-5 в лог-фазе фиксировали, пермеабилизировали, блокировали нормальной козьей сывороткой, а затем обрабатывали первичными антителами кролика против гигантина (белок Гольджи), а затем вторичными антителами козьего антитела против кролика (IgG), конъюгированными с Alexa Fluor 568.Ядра контрастировали с помощью Hoechst 33258.

    Распределение митохондрий в фибробластах легких плода — Митохондрии, присутствующие в культуре фибробластов MRC-5, представленных в этом разделе, были нацелены с помощью MitoTracker Red CMXRos, производного X-розамина. Кроме того, культура была помечена на ядерную ДНК и цитоскелетную F-актиновую сеть с помощью зонда, поглощающего ультрафиолетовые лучи, DAPI и Alexa Fluor 488, конъюгированных с фаллоидином, соответственно.

    Нитевидная актиновая сеть в клетках фибробластов MRC-5 — В этом разделе представлена ​​отдельная клетка фибробласта легкого плода человека (MRC-5), резидентная в культуре, окрашенной Alexa Fluor 568, конъюгированной с фаллоидином, который связывается с внутриклеточной нитчатой ​​актиновой сетью. Затем клетки окрашивали Hoechst 33258 (направленная ДНК в ядро ​​клетки) и лектином агглютинином зародышей пшеницы, конъюгированным с Oregon Green 488 (нацеленным на гликопротеины в комплексе Гольджи).

    Распределение гистонов и пероксисом в культурах клеток легкого плода человека — В эксперименте с двойной иммунофлуоресценцией прикрепленную монослойную культуру клеток MRC-5 фиксировали, повышали проницаемость, блокировали 10-процентной нормальной козьей сывороткой и обрабатывали коктейлем мышиных антибиотиков. -гистоны (pan) и кроличьи первичные антитела против PMP 70 (пероксисомальный мембранный белок), за которыми следуют козьи антимышиные и антикроличьи вторичные антитела (IgG), конъюгированные с Texas Red и Alexa Fluor 488, соответственно.Нитевидную актиновую сеть контрастировали с Alexa Fluor 350, конъюгированной с фаллоидином.

    Конканавалин A Локализация эндоплазматического ретикулума в культурах однослойных клеток MRC-5 — Культура клеток фибробластов легких человека была окрашена с помощью Alexa Fluor 350, конъюгированной с лектином конканавалином A, который избирательно связывается с альфа -манно-манно и альфа -глюкопиранозиловых остатков (в основном в эндоплазматическом ретикулуме).Alexa Fluor 568, конъюгированный с фаллоидином, и SYTOX Green также использовали для маркировки культуры, нацеленной на нитчатый актин и ядерную ДНК, соответственно.

    Клетки фибробластов легких человека с помощью Texas Red-X, Oregon Green 488 и Hoechst 33258 — Чтобы маркировать промежуточные филаменты в логарифмической фазе прилипшей культуры MRC-5, фиксированные и проницаемые клетки блокировали и обрабатывали мышиными антибиотиками. первичные антитела -виментин (хрусталик глаза свиньи), за которыми следуют козьи вторичные антитела против мышиных (IgG), конъюгированные с Texas Red-X.Нитчатый актин визуализировали фаллоидином, конъюгированным с Oregon Green 488, а ядра окрашивали Hoechst 33258.

    НАЗАД В ГАЛЕРЕЮ ФЛУОРЕСЦЕНЦИИ КУЛЬТУРНЫХ КЛЕТК

    НАЗАД В ГАЛЕРЕЮ ФЛУОРЕСЦЕНЦИИ

    Вопросы или комментарии? Отправить нам письмо.
    © 1998-2021, автор — Майкл В. Дэвидсон и Государственный университет Флориды. Все права защищены.Никакие изображения, графика, сценарии или апплеты не могут быть воспроизведены или использованы каким-либо образом без разрешения правообладателей. Использование этого веб-сайта означает, что вы соглашаетесь со всеми юридическими положениями и условиями, изложенными владельцами.
    Этот веб-сайт поддерживается нашей командой

    по графике и веб-программированию
    в сотрудничестве с оптической микроскопией в Национальной лаборатории сильного магнитного поля
    .
    Последнее изменение: пятница, 13 ноября 2015 г., 14:19
    Счетчик доступа с 16 июля 2004 г .: 95041
    Микроскопы, флуоресцентные фильтры и оборудование для цифровой обработки изображений, предоставленное:

    Stem Cells

    Плюрипотентные стволовые клетки, включая эмбриональные стволовые клетки (ES-клетки) и индуцированные плюрипотентные стволовые клетки (iPSC), обладают способностью давать дифференцированное потомство, репрезентативное для всех трех зародышевых листков (эктодермы, энтодермы и мезодермы).Способность размножать плюрипотентные клетки in vitro и подвергать их прямой дифференцировке для получения определенных типов клеток имеет решающее значение для разработки клеточных методов лечения для замены или восстановления ткани, поврежденной болезнью или травмой.

    Мы предлагаем широкий спектр инструментов для поддержки рабочего процесса iPS, включая: наборы для перепрограммирования iPS-клеток; среды и реагенты для культивирования клеток iPS; инструменты для определения характеристик ячеек iPS; и среды для дифференцировки iPS-клеток.

    Плюрипотентные стволовые клетки

    Мы с гордостью предлагаем линии из Европейского банка индуцированных плюрипотентных стволовых клеток (EBiSC), чтобы предоставить исследователям более широкий доступ к почти 800 клеточным линиям iPS человека, полученным от пациентов, для моделирования заболеваний.Этот портфель является расширением нашего партнерства с Public Health England в качестве дистрибьютора его портфеля Европейской коллекции аутентифицированных клеточных культур (ECACC ). Мы предлагаем полное решение для рабочего процесса ИПСК, включая новые наборы для перепрограммирования, культуральные среды ИПСК, антитела к стволовым клеткам и наборы характеристик.

    Нервные стволовые клетки

    Мы предлагаем ряд патентованных линий нервных стволовых клеток человека, полученных из различных источников, включая ИПСК, эмбриональные и эмбриональные стволовые клетки.Все линии NSC поставляются с оптимизированными бессывороточными средами и реагентами для обеспечения надлежащего расширения. Специальные среды для НБК обеспечивают соответствующую дифференциацию, и мы предлагаем инструменты для последующего определения характеристик НБК.

    Мезенхимальные стволовые клетки

    Мезенхимальные стволовые клетки человека (МСК) — это мультипотентные взрослые стволовые клетки, которые обладают способностью к множественной дифференцировке, дающей начало множеству мезенхимальных фенотипов, таких как остеобласты (кость), адипоциты (жир) и хондроциты (хрящ).Благодаря их способности к самообновлению в течение длительных периодов времени и способности дифференцироваться в специализированные клетки возрос интерес к биологии культур МСК, особенно к их терапевтическому потенциалу при различных заболеваниях. Наша обширная коллекция инструментов и технологий для культивирования мезенхимальных стволовых клеток включает линии МСК с низким числом пассажей из различных тканей, оптимизированные среды для размножения и дифференцировки, а также широкий спектр антител, связанных с МСК, и клеточных красителей.

    Ячейки подачи MEF

    Многие протоколы культивирования эмбриональных стволовых (ES) клеток основаны на использовании монослоя первичных эмбриональных фибробластов мыши (питающие клетки MEF). Клетки MEF секретируют в среду несколько важных факторов роста, которые помогают поддерживать плюрипотентность, и они обеспечивают клеточный матрикс, в котором могут расти ES-клетки. Фидерные клетки мышей EmbryoMax ™ PMEF предоставляют исследователям удобное решение для культивирования ES-клеток, устраняя необходимость утомительного выделения и подготовки питающих клеток.

    Культура эмбриональных стволовых клеток мыши

    Модели трансгенных мышей

    Трансгенные технологии и технологии нокаута генов — мощные инструменты для изучения функции генов. Превалирующий метод создания трансгенных мышей и мышей с нокаутом включает введение генетически модифицированных эмбриональных стволовых клеток в эмбрионы мышей на ранних стадиях путем инъекции бластоцисты или методов агрегации. Эти методы приводят к созданию химерного потомства, и генетическая модификация может затем передаваться последующим поколениям, если ES-клетки вносят вклад в зародышевую линию.

    Мы предлагаем широкий спектр инструментов и технологий для культивирования эмбриональных стволовых клеток мыши, включая золотой стандарт ESGRO ® / mLif добавку, ESGRO ® complete и ESGRO ® -2i бессывороточную / бессывороточную среду. В наш портфель входят основные среды для эмбрионов мыши и питающие клетки MEF для хранения, переноса и размножения эмбрионов мыши, используемых для создания моделей трансгенных мышей.

    Добавка ESGRO Mouse LIF для мышей ES культуры

    Более десяти лет исследователи стволовых клеток доверяли своим культурам добавку ESGRO ® LIF для мышей для поддержания плюрипотентного состояния линий ES-клеток мыши.Золотой стандарт для недифференцированной культуры ES-клеток мыши, ESGRO ® mLIF, характеристики:

    • Постоянное ингибирование дифференцировки ES-клеток
    • Удобный формат, поставляется в активных единицах / мл
    • Нет изменений от партии к партии
    • Гибкость: поддерживает культивирование клеток без фидера и на основе фидера

    Бессывороточные среды и добавки для стволовых клеток

    Исторически фетальная бычья сыворотка (FBS) была предпочтительной добавкой для in vitro культуры клеток млекопитающих , включая стволовые клетки.Однако из-за неопределенного состава FBS исследователи перешли на более химически определенные среды и добавки, не содержащие сыворотки и ксено, а также добавки для исследований стволовых клеток. Преимущества бессывороточных сред включают:

    • Последовательность : Определенный состав среды обеспечивает единообразие от партии к партии.
    • Характеристики : Высокая биологическая активность компонентов обеспечивает превосходные характеристики.
    • Прослеживаемость : Компоненты не животного происхождения обеспечивают соответствие международным нормативным требованиям.
    • Наличие : Стабильное предложение и цена.

    Мы предлагаем готовые к использованию запатентованные бессывороточные среды для стволовых клеток для различных типов стволовых клеток, включая ES / iPS человека, нервные (NSC), мезенхимальные (MSC) и гемопоэтические (HSC) стволовые клетки. Эти носители проходят строгий контроль качества, чтобы гарантировать производительность и согласованность.

    Среда и цитокины, производимые

    Stemline ™ cGMP, оптимизированы для размножения и созревания различных типов взрослых стволовых клеток в клинических и производственных условиях.Продукция Stemline ™ — это

    • GMP произведено
    • Без сыворотки и ксенонов
    • Эффективность подтверждена и испытана партиями
    • с подтверждением согласованности

    Топливные элементы | Министерство энергетики

    Топливный элемент использует химическую энергию водорода или другого топлива для экологически чистого и эффективного производства электроэнергии. Если водород является топливом, электричество, вода и тепло — единственные продукты. Топливные элементы уникальны с точки зрения разнообразия их потенциальных применений; они могут обеспечивать электроэнергией системы величиной с коммунальная электростанция и такие маленькие, как портативный компьютер.

    Зачем изучать топливные элементы

    Топливные элементы

    могут использоваться в широком диапазоне приложений, включая транспортировку, погрузочно-разгрузочные работы, стационарные, переносные и аварийные резервные источники питания. Топливные элементы обладают рядом преимуществ по сравнению с традиционными технологиями сжигания, которые в настоящее время используются на многих электростанциях и легковых автомобилях. Топливные элементы могут работать с более высоким КПД, чем двигатели внутреннего сгорания, и могут преобразовывать химическую энергию топлива в электрическую с КПД до 60%.Топливные элементы имеют более низкие выбросы, чем двигатели внутреннего сгорания. Водородные топливные элементы выделяют только воду, поэтому отсутствуют выбросы углекислого газа и загрязнители воздуха, которые создают смог и вызывают проблемы со здоровьем во время работы. Кроме того, топливные элементы работают тихо, поскольку в них меньше движущихся частей.

    Как работают топливные элементы

    Топливные элементы работают как батареи, но они не разряжаются и не нуждаются в подзарядке. Пока есть топливо, они производят электроэнергию и тепло. Топливный элемент состоит из двух электродов — отрицательного электрода (или анода) и положительного электрода (или катода), расположенных вокруг электролита.На анод подается топливо, например водород, а на катод — воздух. В водородном топливном элементе катализатор на аноде разделяет молекулы водорода на протоны и электроны, которые идут к катоду разными путями. Электроны проходят через внешнюю цепь, создавая электрический ток. Протоны мигрируют через электролит к катоду, где они соединяются с кислородом и электронами, образуя воду и тепло. Узнать больше о:

    Просмотрите анимацию топливных элементов Управления по технологиям производства водорода и топливных элементов, чтобы увидеть, как работает топливный элемент.

    Цели исследований и разработок

    Министерство энергетики США (DOE) тесно сотрудничает со своими национальными лабораториями, университетами и отраслевыми партнерами для преодоления критических технических препятствий на пути разработки топливных элементов. Стоимость, производительность и долговечность по-прежнему являются ключевыми проблемами в отрасли топливных элементов. Просмотрите ссылки по теме, которые предоставляют подробную информацию о деятельности по топливным элементам, финансируемой Министерством энергетики.

    • Стоимость — Платина представляет собой один из самых дорогостоящих компонентов топливного элемента, поэтому большая часть исследований и разработок сосредоточена на подходах, которые повысят активность и использование существующих катализаторов из металлов платиновой группы (МПГ) и сплавов МПГ, а также Катализатор без МПГ подходит для долгосрочного применения.
    • Performance — Для улучшения характеристик топливных элементов НИОКР сосредоточены на разработке ионообменных мембранных электролитов с повышенной эффективностью и долговечностью при меньших затратах; улучшение мембранных электродных сборок (МЭБ) за счет интеграции современных компонентов МЭБ; разработка транспортных моделей и экспериментов in-situ и ex-situ для получения данных для проверки моделей; выявление механизмов деградации и разработка подходов к смягчению их последствий; и поддержание основных видов деятельности по компонентам, подсистемам и системам, специально предназначенным для стационарных и переносных энергетических приложений.
    • Долговечность — Ключевым фактором производительности является долговечность, с точки зрения срока службы системы топливных элементов, который соответствует требованиям приложений. Цели Министерства энергетики США для стационарных и транспортных топливных элементов составляют 40 000 часов и 5 000 часов соответственно при реальных условиях эксплуатации. В наиболее требовательных приложениях реалистичные рабочие условия включают примеси в топливе и воздухе, пуск и останов, замораживание и оттаивание, а также циклы влажности и нагрузки, которые приводят к нагрузкам на химическую и механическую стабильность материалов и компонентов системы топливных элементов.НИОКР сосредоточены на понимании механизмов деградации топливных элементов и разработке материалов и стратегий, которые смягчат их.

    Технические мишени

    Загрузите раздел «Топливные элементы» Многолетнего плана исследований, разработок и демонстраций Управления технологий водородных и топливных элементов для получения полной информации о технических целях или просмотрите отдельные таблицы целевых показателей для:

    .